하이라이트
- 이 리뷰에서는 허혈성 뇌졸중에 대한 발열증의 최신 분자 메커니즘을 요약했습니다.
- 이 리뷰는 허혈성 뇌졸중에서 발열증의 조절자로서 천연 식물 성분의 역할을 요약합니다.
- 허혈성 뇌졸중에서 발열증의 조절은 잠재적인 치료 전략으로 제안됩니다.
추상적인
허혈성 뇌졸중 (IS)는 사망 및 장애의 주요 원인 중 하나입니다. 발병기전은 완전히 명확하지 않으며, 염증성 연쇄반응이 주요 원인 중 하나입니다. 병리학적 과정. IS의 현재 임상 실습은 혈액 공급 IS 후 가능한 한 빨리 허혈성 부위로 혈전용해요법 뉴런의 활력과 기능을 보호합니다. 그러나 혈액 재관류는 허혈성 손상을 더욱 가속화하고 허혈-재관류 손상을 유발합니다. 뇌허혈-재관류 손상의 병리학적 과정은 다양한 기전을 수반하며, 정확한 기전은 완전히 밝혀지지 않았다. 발열증, 새로 발견된 염증성 형태 프로그램된 세포 사멸, 염증의 시작과 진행에 중요한 역할을 합니다. 이는 다음을 매개로 하는 전염증성 프로그램 사망입니다. 카스파제 세포 부종 및 파열을 유발할 수 있는 카스파제-1/4/5/11은 염증 인자 IL-1β 및 IL-18을 방출하고 염증 연쇄반응을 유도합니다. 최근 연구에 따르면 파이롭토시스와 그에 따른 염증 반응은 허혈성 뇌 손상을 악화시키는 중요한 요인이며, 파이롭토시스를 억제하면 허혈성 뇌 손상을 완화할 수 있는 것으로 나타났습니다. 또한, 연구에 따르면 천연 식물 성분이 발열증에 규제 효과가 있을 수 있다는 사실이 밝혀졌습니다. 따라서 본 리뷰에서는 파이롭토시스의 분자 메커니즘과 허혈성 뇌졸중에서의 그 역할을 요약할 뿐만 아니라, 파이롭토시스에 대한 참고 정보를 제공하기 위해 파이롭토시스의 조절자로서 천연 식물 성분의 역할도 요약합니다. 치료 미래에는 IS의.
키워드
1. 소개
세계 인구의 노령화로 인해 발병률이 증가하고 있습니다. 뇌혈관 질환 (뇌졸중 등)은 세계에서 두 번째로 큰 규모가 되었으며, 인류에 대한 위협은 증가하고 있습니다. [1]. 뇌졸중에는 다음이 포함됩니다. 허혈성 뇌졸중 (IS) 및 출혈성 뇌졸중, 최대 87%의 뇌졸중이 허혈성입니다. [2]. IS는 일반적인 임상적 응급 상황이며 그 발생률은 해마다 증가하고 있습니다. IS의 현재 임상 실습은 혈액 공급 IS 후 가능한 한 빨리 허혈성 부위로 혈전용해요법 뉴런의 활력과 기능을 보호하기 위해 [3], [4]. 그러나 혈류 회복 후 허혈-재관류 손상(IRI)은 종종 다음과 같은 더 심각한 손상을 초래합니다. 뇌 조직 더욱이 환자의 예후 불량 및 기능 장애를 초래하는 중요한 요인이 됩니다. [5]. 전 세계 역학조사는 1990년부터 2019년까지 전 세계 204개 국가와 지역의 데이터를 분석했다. 보고서에 따르면 뇌졸중은 여전히 사망 원인 2위(총 사망 원인 11.6%), 사망 및 장애 원인 3위(전체 사망 원인 5.7%)입니다. 장애 조정 수명 (DALYs)]에 이어 두 번째입니다. 신생아 질환 (7.3% DALY) 및 허혈성 심장 질환 (7.2% DALYs), 뇌졸중 환자 수는 여전히 증가하고 있습니다. [6], [7], 특히 중국에서는요. 중국은 세계에서 뇌졸중 위험이 가장 높은 국가가 되었습니다. 주민의 뇌졸중 위험은 39.3%에 도달했으며, 중국 남성의 뇌졸중 위험도 41%를 초과하여 세계에서 가장 높습니다. IS는 중국인 사망 원인 3위(1990년 기준)에서 2017년 기준 1위(2017년 기준)로 상승했다. [8]. 현재 연구에 따르면 대뇌 IRI(CIRI)의 병리학적 메커니즘은 주로 다음과 같습니다. 산화 스트레스 부상, 염증성 손상, 미토콘드리아 손상, 자가포식 및 세포사멸 [9], [10], [11], [12], [13], [14]. 그러나 이러한 것들은 질병의 병리학적 기전을 설명하기에는 아직 불충분하다. CIRI. 예를 들어 CIRI 이후의 신경세포 사멸은 주로 세포사멸(apoptosis)에 의해 발생하는 것으로 생각되며, 신경세포 보호 방향은 주로 항세포사멸(anti-apoptosis)이다. 그러나 세포사멸은 염증과 직접적인 관련이 없습니다. [15], [16], 그러나 CIRI에는 상당한 염증 반응이 있습니다. [16]. 따라서 IS의 병태생리학적 기전을 더욱 명확히 하고 CIRI의 병인을 더욱 탐구할 필요가 있다.
발열증, 또한 ~으로 알려진 세포 염증성 괴사는 최근 몇 년 동안 새로 발견되고 확인된 프로그램화된 세포 사멸입니다. [17]. Pyroptosis는 염증에 의존합니다 카스파제 (주로 카스파제-1, 4, 5, 11)이며 다수의 염증 유발 인자의 방출을 동반합니다. 세포가 성장할 때까지 세포가 지속적으로 팽창하는 것으로 나타납니다. 막 파열, 결과적으로 세포 내용물이 방출되고 강력한 염증 반응이 활성화됩니다. [17], [18]. 그만큼 형태학적 특징, pyroptosis의 발생 및 조절 메커니즘은 apoptosis 및 necrosis와 같은 다른 세포 사멸 방법과 다릅니다. [18]. 파이롭토시스는 감염성 질환, 신경계 관련 질환, 죽상동맥경화성 질환, 악성종양 등 다양한 질병의 발생 및 발달에 폭넓게 관여하고 있습니다. [19], [20], [21]. 최근 연구에 따르면 파이롭토시스(pyroptosis)와 그에 따른 매개 염증 반응이 병리학적 과정 IS의 활성을 예방하고, 파이롭토시스의 활성화를 예방하는 것은 염증성 연쇄반응을 억제하고 허혈성 뇌손상을 줄이는 데 유익합니다. [22], [23]. 이를 바탕으로 pyroptosis에 대한 연구가 매우 중요합니다. 치료 IS의; 파이롭토시스를 조절하면 IS의 치사율을 낮추고 뉴런의 생존율을 향상시키며 IS 환자의 증상을 호전시킬 수 있습니다. 현재, 약제 발휘하는 신경보호 pyroptosis 경로를 조절함으로써 효과가 개발되고 있습니다. 특히, IS에서 혈관 신경 단위의 파이롭토시스를 조절하는 천연 식물 성분에 대한 많은 연구가 있습니다. 우리의 이전 연구에서도 다음과 같은 사실이 밝혀졌습니다. 사포닌 [24], [25], [26] 및 다성분 화합물 [27], [28] 을 조절할 수 있다 생물학적 과정 IS의 파이롭토시스. 따라서 본 리뷰에서는 파이롭토시스의 분자 메커니즘과 허혈성 뇌졸중에서의 그 역할을 요약할 뿐만 아니라, 파이롭토시스 조절제로서 천연 식물 성분의 역할을 요약하여 향후 파이롭토시스 관련 약물 개발을 위한 납 화합물 또는 천연 식물 성분을 제공합니다.
2. 열분해증
2.1. 파이롭토시스의 특징
발열증 의 형태이다 프로그램된 세포 사멸 염증 유발 물질에 의존 카스파제이는 막관통 공극의 형성, 세포막의 부종 및 파열, 염증 유발 물질의 방출을 특징으로 합니다. [29]. 세포사멸 과정에서 세포는 주변 조직에 염증 반응을 일으키지 않는 핵 단편화 및 세포막 완전성을 갖는 반면, 파이롭토시스 과정의 세포는 완전한 핵 형태와 세포를 가지고 있습니다. 막 파열, 이는 말초 염증을 유발합니다. [30]. 파이롭토시스가 발생하면 세포막이 점차 파열되어 1~2nm의 세포막 공극이 형성되고, 이후 세포내 염증인자 및 기타 물질과 같은 세포 내용물이 세포막 외부로 방출됩니다. 다음과 같은 막 투과성 염료 에티듐 브로마이드 세포가 파이롭토시스를 겪는지 여부를 관찰하는 데 사용할 수 있습니다. [31]. 또한 괴사의 발생은 혼합된 계열의 단백질 키나아제 유사에 따라 달라집니다. 도메인 단백질 (MLKL)은 세포로 들어가는 이온에 대해 선택적이며, 핵 염색질은 응집성이 있거나 가장자리에 덩어리져 있습니다. 열분해증은 핵을 유발하는 비선택적 단백질인 기공 형성 단백질 GSDMD에 의존합니다. 발열증 그리고 DNA 단편화 [32]. pyroptosis, apoptosis, necroptosis 및 사이에는 유사점과 차이점이 있습니다. 페롭토증, 원인, 셀 변경 등 자세한 내용은 1 번 테이블.
1 번 테이블. pyroptosis, apoptosis 및 necroptosis의 유사점과 차이점.
형질 | 시그니처 구성 요소 | 세포의 변화 | 일반적인 원인 | 억제제 | 참조 |
---|---|---|---|---|---|
발열증 | 파이롭토솜, 인플라마솜 | 기공 형성, 세포 부종, 원형질막 파열, 염색질 응축, DNA 단편화, 핵 완전성 등 | DAMP, PAMP, 감염 | GSDMD 억제제 | [19], [33], [34], [35], [36] |
세포사멸 | 아폽토솜 | 손상되지 않은 막, 원형질막 수포, 염색질 응축, DNA 단편화 등으로 인해 세포가 수축됩니다. | 생리적 상태의 유전자 조절 | 조절 카스파제 계열, Bcl-2 계열, p53 등 | [37], [38], [39] |
괴사증 | 괴사 | 세포 부종, 원형질막 파열, 소기관 부종, 염색질 응축 등 | 심각한 부상 | Nec-1, NSA 등 | [33], [40], [41], [42], [43] |
Ferroptosis | NRF2, GPX4, ACSL4 등 | 주로 미토콘드리아에서 발생하며 미토콘드리아 크리스타가 감소하고 막이 응축되고 외막이 파열됩니다. | Fe2 + 과부하 및 ROS | GSH, 데페록사민, 리프록스타틴-1, 페로스타틴-1 등 | [44], [45], [46], [47] |
2.2. 파이롭토시스의 분자 메커니즘
형성 염증 부상 후 발열증의 핵심 물질입니다. 부상을 입으면 신체는 병원체 관련 분자 패턴(PAMP) 및 손상 관련 분자 패턴(DAMP)과 관련된 패턴 신호를 활성화할 수 있습니다. [48]. 신호 자극이 발생하면 세포 내 프로모터 단백질 뉴클레오티드 결합 올리고머화 도메인 유사 수용체 피린 도메인 3(NLRP3)을 함유하는 것은 올리고머화를 통해 염증복합체 어댑터 분자 ASC를 사용하여 대량의 프로카스파제-1을 모집할 수 있습니다. [49], 염증복합체 응집 단백질의 형성. 프로카스파제-1은 카스파제-1의 전구체이며, 일반적으로 프로카스파제-1은 체내에 다음과 같은 형태로 존재합니다. 발효균. 자극 신호가 프로카스파제-1에 전달되면 자가가수분해에 의해 P20 및 P10 하위 단위가 생성됩니다. 이 하위 단위는 먼저 이종이량체 기능하지 못하는 것이 모여서 하나의 형태를 이룬다. 사량체 카스파제-1 활성을 촉진하여 카스파제-1 활성화를 유도하는 물질입니다. [50]. 카스파제-1이 활성화되면 활성 카스파제-1은 세포막 구멍의 형성과 세포막의 신속한 용해를 담당하여 염증 반응을 형성합니다. 한편, 카스파제-1은 IL-1β 및 IL-18의 전구체인 pro-IL-1β 및 pro-IL-18을 유도하여 성숙 과정을 가속화할 수도 있습니다. 성숙한 IL-1β와 IL-18은 세포외로 방출되어 더 많은 염증복합체를 모집합니다. 인플라마솜이 응집된 후에는 염증 반응이 더욱 악화되고 조직 손상이 더욱 악화됩니다. IL-1β가 세포에서 방출된 후 염증 인자는 림프의 흐름을 따라 인접한 조직으로 퍼져 염증 반응을 더욱 악화시킵니다. IL-18이 다량 분비되면 Th1, Th2 면역반응이 일어나며, 면역반응을 자극하여 역할을 합니다. [51].
2.2.1. 정식 파이롭토시스 경로
카스파제-1은 인플라마솜이 카스파제-1의 활성화에 중요한 역할을 하는 표준 발열 경로의 핵심 단백질입니다. [52]. 인플라마솜은 선천성 면역 체계의 중요한 부분이며 센서 단백질, ASC 및 pro-Caspase-1로 구성된 다중 단백질 복합체입니다. 자극받은 세포질에 존재한다. 면역세포 세포외 자극 신호를 감지할 수 있습니다. [53], [54]. 인플라마좀은 뉴클레오타이드 결합 올리고머화 도메인 유사 수용체(NLR)를 포함하는 인플라마좀으로 나누어집니다. 흑색종 2(AIM2) 인플라마솜 및 NLRC4 인플라마솜 [55], [56]. Purinergic 2 × 7 (P2X7) 수용체는 ATP-gated transmembrane 이온 채널 수용체로 다음과 같이 표현됩니다. 소교세포 염증복합체 활성화의 핵심 요소입니다. 연구에 따르면 세포외 ATP는 다음을 활성화하여 K+ 유출을 조절할 수 있습니다. P2X7 수용체, NLR 계열인 피린 도메인 함유 3(NLRP3)의 활성화를 유도합니다. [57]. NLRP3 인플라마솜은 현재 가장 많이 연구되고 있습니다. NLRP3 인플라마솜의 활성화에는 2단계 반응이 필요합니다. 반응의 개시, 미생물 또는 내인성 인자 핵인자-κB(NF-κB)의 핵 내로의 반응 개시, NLRP3 및 pro-IL-1β 발현의 상향 조절 [58], [59]. 면역 세포가 DAMP에 의해 자극되면 센서 단백질은 ASC를 통해 pro-Caspase-1을 모집하고 자가 가수분해에 의해 활성화됩니다. 성숙한 Caspase-1은 하류의 비활성 pro-IL-1β 및 pro-IL-18을 활성 IL-1β 및 IL-18로 처리합니다. [60]. 한편, 카스파제-1은 다운스트림 GSDMD 단백질을 기공 형성 활성을 갖는 GSDMD-N 단편 및 GSDMD-C 단편으로 절단합니다. GSDMD-N 단편은 특이적으로 다음을 인식하고 결합합니다. 막지질 세포막 안쪽에 존재하여 세포내 및 세포외 삼투압의 변화를 일으키고 이로 인해 세포가 부풀어 오르고 파열되며 염증인자 IL-1β 및 IL-18이 방출되어 염증반응 및 세포 발열증을 유발합니다. [61].
2.2.2. 비정규 파이롭토시스 경로
Caspase 계열은 주로 기능에 따라 세포사멸 관련 및 염증 관련 두 가지 범주로 나뉩니다. 카스파제-3/2/10은 주로 세포사멸을 중재하는 반면, 카스파제-1/4/5/11은 염증과 선천적 면역 반응의 핵심 중재자입니다. [62], [63]. 비표준 pyroptotic 경로는 Caspase-4/5/11 활성화에 의존하는 반면, inflammasome은 IL-1β 및 IL-18의 성숙에 필수적이지 않습니다. [64]. 파이롭토시스의 비고전적 경로는 다음에 의해 유발됩니다. 지질다당류 (LPS)는 그람 음성균의 세포벽 성분입니다. LPS는 인간 Caspase-4/5 및 마우스 Caspase-11에 직접 결합할 수 있습니다. 이러한 카스파제는 LPS의 센서 단백질과 이펙터 분자 역할을 합니다. 활성화된 Caspase-4/5/11은 GSDMD를 직접 절단하고 파이롭토시스를 유도합니다. [65]. 또한 연구에 따르면 Caspase-11은 다운스트림을 활성화할 수 있습니다. 간격 접합 채널 단백질 K+ 유출을 촉진하는 Pannexin-1과 K+ 유출은 NLRP3 염증복합체를 활성화할 수 있으며, 이는 차례로 Caspase-1을 활성화하고 IL-1β 및 IL-18의 성숙을 촉진합니다. [66].
2.2.3. GSDMD와 발열증의 관계
GSDMD(Gsdermin D)는 484개의 아미노산 잔기 단편으로 구성된 단백질이며 Gasdermin 단백질 계열의 구성원입니다. 이 계열에는 주로 DFNA5, DFNB59, GSDMA, GSDMB, GSDMCD 등 5개의 구성원이 있습니다. 이들 5개 단백질의 아미노산 구조는 매우 유사하며, 이들 단백질은 N-말단과 C-말단이라는 두 개의 공간 도메인을 포함합니다. [67]. GSDMD 단백질은 장쇄 아미노입니다 산성 단백질, N 말단 도메인과 C 말단 도메인 사이의 구조는 상대적으로 느슨합니다. GSDMD는 일반적으로 다음에서 절단됩니다. 아미노산 서열 275, N-말단 및 C-말단 도메인 노출. ~ 안에 포유류 세포, GSDMD의 단순한 N 말단 구조는 세포 발열을 조절할 수 있습니다. 따라서 GSDMD는 N-말단 도메인을 발현하는 경우가 많지만 모든 GSDMD 단백질을 발현할 수는 없습니다. [68], [69]. 그러나 연구에 따르면 GSDMD의 N 말단 도메인을 대장균에 도입하여 배양하면 강한 독성 효과가 발생하는 것으로 나타났습니다. 대조적으로, 손상되지 않은 GSDMD 및 GSDMD의 C-말단 도메인은 상대적으로 낮은 독성을 나타냈습니다. [70]. 세포내 GSDMD의 N 말단 구조는 손상 요인의 침입과 함께 점차적으로 세포막으로 이동하고, 세포막에서는 포스포사르코시나제와 특이적으로 결합합니다. 포스파티딜세린 세포막에 생물학적 효과를 생성하기 위해 [71]. 원자력과 같은 장비를 사용하여 전자현미경 L. Sborigi는 저온전자현미경을 통해 GSDMD의 N 말단 구조가 생물막과 결합되어 생물막에 속이 빈 고리형 중합체를 형성할 수 있음을 관찰했습니다. 이 중합체는 생물막 공극의 형성을 유도하며, 이로 인해 GSDMD는 내인성 손상이 발생할 때 세포에서 파이롭토시스를 유도합니다. 외부일 때 병원체 침입하여 병원균의 세포표면에 흡착하고, 세포를 용해시켜 외부 유해물질로부터 신체를 보호하는 역할을 한다. [72]. GSDMD는 하류의 카스파제-1/4/5/11 단백질에 특이적으로 결합하는 물질입니다. 신호 변환 [73]. 카스파제-1은 다양한 단백질과의 복합체에 의해 생성된 염증복합체 반응을 통해 세포막 밖으로 하류 IL-1β 및 IL-18의 방출을 촉진합니다. 활성화된 카스파제-1은 GSDMD 단백질을 절단하여 GSDMD를 활성 펩타이드로 전환합니다. GSDMD의 분해산물이 세포막에 특이적으로 결합하여 세포외 물분자 등의 성분이 기공을 통해 세포막 안으로 들어가 세포가 부풀어오르게 되어 결국 파열되게 된다. [74].
2.3. Noncoding RNA는 IS에서 pyroptotic 유전자의 발현에 참여합니다.
최근에는 발열증 발생과 관련된 유전자 수준의 조절 메커니즘도 완전히 개발되었습니다. 현대 분자 생물학 연구에 따르면 게놈의 98%는 단백질 코딩에 관여하지 않습니다. 장쇄 코딩 RNA(lncRNA)는 단백질 코딩 기능이 없는 RNA로, 길이가 200개 이상의 뉴클레오티드이기 때문에 이러한 이름이 붙었습니다. [75], [76]. 그러나 비록 ~ 일지라도 lncRNA 단백질을 암호화하는 기능은 없지만 체내에서 가장 많이 발현되는 유전자이자 전사에서 가장 잘 보존되는 유전자이다. 신체의 중요한 병리학적, 생리학적 과정, 특히 재관류 손상 관련 질환에 참여하며 중요한 역할을 합니다. [77]. 연구에 따르면 소교세포에서 lncRNA-H19의 발현 수준은 재관류 기간과 양의 상관관계가 있는 것으로 나타났습니다. [78]. LncRNA-H19의 과발현은 하류 신호 분자 NLRP3/6의 발현을 촉진하고 GSDMD를 개시할 때 염증 역할을 합니다. [79], [80], [81]. lncRNA-H19는 카스파제 단백질 계열 구성원을 활성화할 수 있습니다. [82], 미토콘드리아 기능 장애로 이어지고 염증복합체 활성화에 참여하며 신경 손상을 유발합니다 [83]. lncRNA-H19는 분자 구조의 조절 외에도 mRNA 전사 과정을 조절하기 위해 더 많은 전사 인자를 모집할 수 있습니다. [84]. 또한, lncRNA-H19는 다음을 촉진할 수도 있습니다. 핵 수송 전사 인자의 과정을 통해 더 많은 표적 유전자의 특이적인 발현을 증가시키고, 염증성 연쇄 네트워크를 생성합니다. 국소 빈혈 발생하다 [84]. 따라서 lncRNA-H19는 다음과 같은 경우에 강력한 위험 신호입니다. CIRI 발생하고 H19의 억제가 잠재적일 수 있습니다. 치료 허혈-재관류 손상의 경우 [84]. 허혈-재관류 손상이 가능한 AIM2 염증복합체 매개 파이롭토시스에서 lincRNA MEG3/miR-485/AIM2 축은 CIRI 동안 caspase1 신호 전달을 활성화하여 파이롭토시스를 촉진하므로 이 축은 다음과 같은 효과적인 치료 표적이 될 수 있습니다. 이다 [84]. 에 대한 면역 조절 소교세포의 Wang et al. LncRNA-Fendrr이 유비퀴틴화 HERC2를 통한 NLRC4 단백질 분해 및 소교세포 파이롭토시스 조절 [85]. Zhang et al. lncRNA NEAT1/miR-22-3p 축이 파이롭토시스를 억제하고 CIRI 손상을 약화시키는 것으로 나타났습니다. [86]. IS 후 시험관 내 산소-포도당 결핍(OGD) 손상 실험에서는 OGD가 NOD 유사 수용체 단백질 3(NLRP3) 발현을 증가시켜 NSC의 파이롭토시스 사망을 유도하는 것으로 나타났습니다. 고압산소치료. 상향조절된 lncRNA-H19는 miR-423-5p의 분자 스펀지 역할을 하며, OGD 이후 NLRP3를 표적으로 삼아 신경줄기세포(NSC) 파이롭토시스를 유도합니다. 따라서 고압산소요법은 lncRNA-H19/miR-423-5p/NLRP3 축을 억제하여 NSC를 발열증으로부터 보호한다는 것이 확인되었습니다. [87]. miR-21은 마이크로RNA (miRNA)는 발열증 발생과 밀접한 관련이 있습니다. 연구에 따르면 miR-21은 NLRP3 단백질을 특이적으로 조절하고, NLRP3 단백질을 활성화하고, NLRP3 분비를 자극하고, 염증 피드백 경로를 통한 NF-κB 신호 전달을 통해 대식세포에서 발현할 수 있는 것으로 나타났습니다. [88]. NLRP3 활성화 외에도 miR-21은 다운스트림 카스파제-1의 활성화를 조절하고 IL-1β의 분비를 촉진하며 발열증의 발생을 촉진할 수 있습니다. miR-21이 결핍되면 NLRP3에 의해 조절되는 카스파제-1 경로의 발현이 크게 감소합니다. 따라서 miR-21의 발현 수준은 발열증의 발생을 조절하는 핵심 연결 고리이기도 합니다. [89], [90]. 현대 분자 생물학 연구에 따르면 miR-214-3p에는 카스파제-1의 결합 부위가 있으며, 이는 카스파제-1의 발생에 특이적으로 결합하여 염증 반응을 조절하고 발열증의 발생률을 증가시킬 수 있습니다. [91].
pyroptosis의 분자 메커니즘은 다음과 같이 요약되었습니다. 그림 1.
2.4. 파이롭토시스와 다른 세포 손상 사이의 관계
뇌허혈-재관류 손상의 발생에는 다양한 메커니즘이 관여합니다. 알려진 메커니즘은 염증 반응, 칼슘 채널 장애, 미토콘드리아 기능 손상 및 자가포식과 같은 다양한 메커니즘과 관련이 있습니다. Pyroptosis는 뇌허혈-재관류 손상의 모든 측면에 관여하며 다른 손상과 밀접하게 관련되어 있습니다.
pyroptosis와 apoptosis의 발생은 모두 세포 사멸의 한 방식에 속하지만 근본적으로 다릅니다. 아폽토시스는 세포 사멸의 생리학적 방법인 반면, 파이롭토시스는 종종 신체 손상 후 병리학적 세포 사멸과 관련이 있습니다. [92]. 자가포식은 널리 존재하는 자가포식 현상의 일종입니다. 진핵 세포. 자가포식은 일반적으로 샤페론 매개 자가포식, 미세자가포식, 거대자가포식의 세 가지 유형으로 구분됩니다. 현재 거대자가포식에 관한 많은 연구가 진행되고 있다. [93]. 자가포식은 세포의 정상적인 대사 과정에 없어서는 안 될 부분입니다. 자가포식을 억제하면 조직, 기관 또는 세포에 유해 물질이 축적될 수 있습니다. 자가포식의 과도한 활성화는 중요한 세포내 소기관과 필수 단백질을 파괴하여 자가포식 세포사멸을 유발합니다. [94].
파이롭토시스와 자가포식은 불가분의 관계에 있습니다. 정상적인 상황에서 생체 내 자가포식과 발열증의 발생은 동적 평형 상태에 있습니다. 신체가 외부 자극에 대한 염증 반응을 일으키면 자가포식과 파이롭토시스 사이의 균형이 깨집니다. [95]. 예를 들어 NF-κB는 신호 전달 경로 많은 신호 전달에 참여하는 신호 경로 신호 변환을 달성하기 위해. 연구에 따르면 NF-κB 유전자가 녹아웃된 IS 마우스에서 mTOR 활동이 억제되고 자가포식 수준이 향상되었습니다. NF-κB의 신호전달 활성화 경로는 NF-κB 유도 키나제를 활성화시키는 다수의 자극으로 IκKα, IκKB 및 IκKγ 삼량체를 활성화시켜 IκB의 인산화 및 분해를 일으키고 최종적으로 NF-κB 신호전달 경로를 활성화시킵니다. . 활성화 후 NF-κB는 세포에 들어가 해당 DNA 수용체에 특이적으로 결합하여 염증 인자의 전사를 자극하고 염증 인자 TNF-α, IL-1β 및 IL-6의 대량 발현을 촉진합니다. 연구에 따르면 NF-κB 신호 전달 경로는 파이롭토시스를 유발하는 주요 파이롭토시스 단백질 NLRP3의 전사 전 및 전사 후 수준의 활성화를 조절하는 데 관여하는 것으로 나타났습니다. 풍부하게 발현되는 염증인자는 체내에서 염증 연쇄반응을 일으키고, 발열증을 유발하며, 염증 반응을 더욱 확장시켜 뇌손상을 악화시킬 수 있습니다. [96], [97], [98].
2.5. IS와 관련된 발열증 및 염증의 메커니즘
염증성 연쇄반응은 IS의 다양한 단계에 존재합니다. [99]. IS의 초기 단계에서는 뇌의 혈류가 느려지고 호중구 ~을 고수하다 내피 세포 허혈성 혈관이 파괴되고 초기 급성 염증 반응이 시작됩니다. [100]. 뇌허혈 후 재관류가 발생하면 외인성 염증인자, 염증세포 및 염증인자가 혈액뇌관문을 통과하여 재관류 후 허혈의 2차적인 영향을 미치게 되고, 산화인자와 산화인자가 다량으로 방출되게 된다. 자유 라디칼. 이 때, 미세아교세포는 뇌 조직 점차적으로 대량으로 활성화되어 더 많이 생산됩니다. 염증 매개체. 이러한 유형의 염증 매개체는 뇌 조직의 내피 세포를 과도하게 활성화하고 다량의 염증 매개체를 생성할 수 있습니다. 조직 인자 아미노산의 독성을 축적합니다. 이는 산화 인자, 자유 라디칼의 방출을 더욱 악화시킵니다. 일산화탄소NF-κB, Toll 유사 수용체 및 Nod 유사 수용체(NLR)와 같은 염증 반응 관련 신호 전달 경로를 활성화합니다. [101], [102]. 예를 들어, NLR에 대한 연구에 따르면 NLR에는 23개의 계열 구성원이 있으며 주로 세포질에서 발현되고 신체의 선천적 면역 반응에 중요한 역할을 합니다. NLR 계열인 Nalp1, Nalp3, Nalp5 및 Ipaf의 구성원은 다음을 통해 카스파제-1 활성화를 활성화할 수 있습니다. 어댑터 단백질 ASC는 일련의 염증 반응을 시작하고 발열증을 중재합니다. [103], [104]. NLRP3는 염증 인자의 중요한 구성 요소입니다. NLRP3에는 PYD, NACHT, LRR의 세 가지 도메인이 포함되어 있으며 이는 LRR-NACHT-PYD: PYD-CARD: CARD-CARDC spase 도메인으로 표시할 수 있습니다. 이는 내인성 손상의 다양한 신호에 반응하므로 NLRP3 인플라마좀의 활성화가 파이롭토시스의 주요 유형으로 간주됩니다. [105], [106], [107].
인플라마솜은 신체가 감염이나 세포 손상 신호를 받은 후 조립된 단백질 복합체이며, 프로카스파제-1의 모집 및 활성화를 위한 플랫폼 역할을 합니다. 프로모터 단백질 NLRP3은 염증복합체 어댑터 분자 ASC를 사용한 올리고머화를 통해 다량의 프로카스파제-1을 모집할 수 있습니다. [108]. 프로카스파제-1은 카스파제-1의 전구체이며, 활성 카스파제-1은 세포를 빠르게 용해시켜 세포외 IL-1β 및 IL-18을 활성화 및 방출하는 역할을 하며, 이는 염증 반응을 더욱 악화시킵니다. 따라서 파이롭토시스의 발생은 염증 반응의 출현 및 인플라마솜의 형성과 밀접한 관련이 있습니다. 뇌허혈-재관류 손상의 발생은 발열증과 염증 반응 사이의 상호작용과 더 밀접하게 관련되어 있습니다 [109], [110]. 특히 중추신경계에서는 성상교세포가 소교세포의 활성화와 증식을 유도하고 수많은 염증 매개체를 생성합니다. 이러한 염증 매개체는 내피 세포를 활성화하여 다양한 조직 인자를 생성하고 독성을 증가시킬 수 있습니다. 흥분성 아미노산, 출시를 홍보합니다. 산화질소 그리고 산소 자유 라디칼. 위의 물질은 NF-κB 및 JNK2/STAT3와 같은 다중 염증 신호 전달 경로의 활성화를 유도하고 NLRP1 및 NLRP3와 같은 염증복합체의 조립을 촉진합니다. 활성화된 카스파제-1은 세포의 열분해를 유도하고, 염증 반응을 확장시키며, 뇌 허혈-재관류 손상을 악화시킵니다 [111], [112]. 일부 연구에서는 야생형 마우스와 비교하여 AIM2 뇌의 AIM2 및 IL-1β 수준이 더 높은 것으로 나타났습니다. 녹아웃 마우스 뇌허혈-재관류가 유의하게 감소한 후 경색 부피가 유의하게 감소했으며 신경 기능 점수도 눈에 띄게 좋아졌습니다. AIM2 인플라마솜 활성화를 억제하면 발열증의 발생을 어느 정도 억제하여 허혈성 뇌손상을 줄일 수 있습니다. [113]. 그러므로 파이롭토시스는 뇌허혈-재관류 손상 과정에서 중요한 역할을 한다. NLRP3 인플라마좀은 파이롭토시스 경로의 핵심 단백질이며, 이의 발현을 억제하면 하류 파이롭토시스 경로 관련 단백질의 발현을 동시에 억제하고 염증 반응을 제한하며 뇌 허혈-재관류 손상을 완화할 수 있습니다.
2.6. Pyroptosis와 미토콘드리아 손상은 IS 후 산화 스트레스 손상을 중재합니다
미토콘드리아는 주로 세포의 호기성 호흡에 관여하며 호기성 호흡이 일어나는 곳입니다. 미토콘드리아는 세포 간 정상적인 신호 전달과 신경 세포의 신호 전달을 위한 이온화된 기반을 제공합니다. [114]. 미토콘드리아 손상은 대부분 비정상적인 원인으로 인해 발생합니다. 미토콘드리아 대사 그리고 산화적 손상 [115]. 연구에 따르면 뇌 허혈-재관류 손상은 미토콘드리아 기능 장애와 밀접한 관련이 있는 것으로 나타났습니다. [116]. 산화 손상 발생의 핵심인 산화 스트레스는 파이롭토시스와 밀접한 관련이 있습니다. [117], [118]. 산화 스트레스는 뇌 조직 손상, 특히 뇌 허혈 및 뇌 손상에서 발현될 가능성이 더 높습니다. 재관류 손상 뇌허혈 후 [119]. 신체가 외부 유해물질의 공격을 받으면 세포에서는 다량의 로스 그리고 활성탄, 이는 산화와 항산화 사이의 균형을 무너뜨려 일련의 산화 손상 반응을 일으킵니다. [120]. ROS의 대부분은 미토콘드리아에서 분비됩니다. [121]. 외부 자극에 의해 자극을 받거나 내인성 손상이 발생하면 신체는 높은 수준의 ROS를 유도하여 인플라마솜 단백질 복합체를 활성화함으로써 뉴클레오티드와 NLRP3의 결합을 자극합니다. ROS가 과도하게 활성화되면 신체 내 신호 전달 경로의 정상적인 순서가 중단되어 세포 내 유전 물질, 단백질 및 다양한 세포 소기관(미토콘드리아 포함)이 파괴됩니다. 세포 내 미토콘드리아 등 다양한 소기관이 손상되면 세포의 영양과 대사에 이상이 생기고, ROS는 세포의 손상을 더욱 악화시킬 수 있습니다. 혈관 내피 그리고 교란을 유도한다. 미세 순환 뇌에서. 뇌의 혈액뇌장벽 투과성 장애로 인해 세포 접착 분자, 이로 인해 뇌 손상이 악화됩니다. [122]. 그 동안에, 산화 스트레스 세포가 점차 증가하는 것을 특징으로 하는 세포 사멸 모드를 나타냅니다. 세포막 투과성 및 세포 내용물의 방출 – 파이롭토시스 [120]. 따라서 파이롭토시스와 미토콘드리아 손상은 모두 뇌 허혈-재관류 손상의 병리학적 과정에 관여합니다. 미토콘드리아 운동성 관련 단백질 Drp1은 미토콘드리아가 정상적인 생리적 기능을 유지하는 데 필요한 핵심 단백질인 것으로 보고되었습니다. [123]. Drp1의 발현이 증가하면 다음을 억제할 수 있습니다. 미토콘드리아 핵분열 처리하고 파이롭토시스 수준을 감소시켜 손상 발생 속도를 늦춥니다. [124]. 신체가 다양한 내인성 및 외인성 손상 자극을 받으면 신체의 신호 전달 경로의 조절 과정이 변경됩니다. Drp1의 분비 감소, 미토콘드리아 손상, 미토콘드리아 기능 장애, 세포사멸 및 파이롭토시스 증가로 나타나며, 이는 체내의 다양한 질병을 유발합니다 [125]. 최근 연구에 따르면 미토콘드리아 기능 장애는 뇌 허혈/재관류 손상 동안 NLRP3 염증복합체 활성화를 유도합니다. [126]. 미토콘드리아 결합 해제 단백질 2 (UCP2) 결핍은 CIRI 후 뇌 손상을 악화시키며, 새로운 연구에 따르면 UCP2 결핍은 시험관 내 및 생체 내에서 고혈당증 유발 CIRI 악화 후 NLRP3 인플라마솜 활성화를 향상시키는 것으로 나타났습니다. UCP2는 고혈당으로 인한 CIRI 악화에 대한 잠재적인 치료 표적이 될 수 있습니다. UCP2 결핍은 또한 시험관 내 및 생체 내 뉴런에서 NLRP3 인플라마솜 활성화 및 ROS 생성을 향상시켰습니다. [127]. 아디포넥틴 광범위한 항산화 및 항염증 효과를 지닌 지방 유래 호르몬입니다. Adiponectin 펩타이드는 AMPK/GSK-3β를 조절하여 뇌 허혈-재관류 손상 후 산화 스트레스와 NLRP3 염증복합체 활성화를 약화시킵니다. [128]. 따라서 IS에서는 발열증의 발생과 미토콘드리아 손상 사이에 밀접한 관계가 있으며, 둘 사이에는 밀접한 상호 작용이 있습니다.
2.7. 산화 스트레스/질산화 스트레스는 IS 후 파이롭토시스를 매개합니다
산화/질산화 스트레스 및 신경염증 핵심이다 병리학적 과정 뇌 허혈-재관류 손상, 중재 신경 손상, 혈액 뇌 장벽 손상 및 허혈성 뇌졸중 중 출혈 변형 [129], [130]. 산화질소(NO) 및 과산화질산염 (ONOO-)는 CIRI의 일반적인 RNS입니다. [130], [131]. 3개의 이성질체가 있다 산화질소 합성효소: 내피 산화질소 합성효소 (eNOS)는 낮은 NO 농도를 생성하고 생리학적 기능을 가지고 있습니다. ~하는 동안 뉴런 산화질소 합성효소 (nNOS) 및 유도성 산화질소 합성효소 (iNOS)는 높은 NO 농도를 생성하여 염증을 유발하고 혈액뇌장벽 투과성을 증가시킵니다. [132]. ROS/RNS의 과잉생산은 스트레스가 많은 미세환경을 생성하고 일련의 세포 신호전달 계통으로 이어져 염증, 혈액뇌장벽의 과투과성, 뇌부종 그리고 신경 세포 사멸 [133], [134]. 퍼옥시니트리트 매개체 DNA 가닥 중단하고 활성화합니다. 리보자임 폴리(ADP-리보스) 중합효소(PARP) 또는 폴리(ADPribose)라고도 알려진 폴리(ADP-리보스) 신타제(PARS) 전이효소 (pADPRT). ONOO- PARP를 직접 활성화할 수 있습니다. [135], 생체 내 및 시험관 내 실험은 허혈성 뇌 손상에서 ONOO-/PARP 신호 전달 경로의 역할을 입증했습니다. 생체 내 실험에서는 NOS가 결핍된 쥐가 허혈성 뇌졸중 동물 모델에서 PARP 활성화가 덜 나타나는 것으로 나타났습니다. 시험관 내 실험에서는 NO 기증자가 아닌 ONOO 기증자가 배양된 C6에서 PARP 활성화를 유의하게 유도하는 것으로 나타났습니다. 신경교종 세포. 유전자 파괴 또는 PARP의 침묵이 크게 감소합니다. 뇌경색 크기, 완화 신경독성, 신경혈관 단위를 보호하고 신경학적 결과를 개선합니다. [136], [137], [138]. 연구에 따르면 ROS/RNS는 CIRI 동안 염증복합체의 활성화 인자일 수 있습니다. [139]. 인플라마솜은 소교세포질의 다중 단백질 복합체로, 그 중 NOD 유사 수용체 3(NLRP3)이 가장 널리 연구되고 있습니다. NLRP3는 카스파제-1을 유발 및 활성화하고, IL-1β 및 IL-18을 활성화하여 이를 뇌로 방출합니다. 세포외 공간, 염증의 발달을 촉진 [140]. 생체 내 실험에서는 NLPR3 녹아웃 마우스의 뇌경색 크기와 BBB 손상이 야생형 마우스의 경우보다 낮았다. 추가 실험에서는 NLRP3가 IL-1β의 방출을 중재하고 대뇌 미세혈관 내피 세포의 투과성을 증가시킬 수 있음을 보여주었습니다. [141]. 핵 인자 E2 관련 요인 2 (Nrf2)는 세포 항산화 반응을 조절하고 Nrf2는 산소 및 포도당 결핍 상태에서 BV2 미세아교세포에서 ROS 매개 NLRP3 생성을 억제합니다. [142]. 산화/질산화 스트레스는 카스파제1/염증복합체 활성화의 주요 유발 요인이 될 수 있는 퍼옥시니트라이트의 형성을 유도하는 것으로 밝혀졌습니다. [143]. 따라서 ROS/RNS 매개 염증복합체는 허혈성 뇌손상에 대한 잠재적인 치료 표적이 될 수 있습니다.
또한 ROS/RNS는 Toll 유사 수용체의 활성화를 중재합니다. 현재 연구에 따르면 TLR(Toll-like Receptor)은 타고난 수용체로 널리 연구되어 왔습니다. 면역 수용체및 TLR4/2는 대뇌에서 더 많이 연구되었습니다. 허혈성 손상. TLR4 IL-1β, MMP-9, iNOS 및 COX-2의 발현을 중재하고 산화 스트레스로 인한 뇌 손상을 악화시킬 수 있습니다 [144]. TLR4 억제제의 적용 E5564 재생할 수 있음을 보여주었습니다. 신경보호 소교세포의 활성화와 ROS 생성을 억제함으로써 역할 [145]. IS 후, TLR4 결핍 마우스의 경색 크기는 야생형 마우스의 경색 크기보다 현저히 작았습니다. [146]. TLR4는 post-IS에도 관여합니다. 신경발생. 양전자 방출 단층 촬영 연구에 따르면 TLR4 결핍 마우스는 IS에서 신경 발생을 강화하고 염증 반응을 억제하는 것으로 나타났습니다. [147]. 또한, 생체 내 실험 연구에 따르면 TLR2/4/NF-κB 신호 전달 경로를 억제하면 산화 스트레스, 염증 반응 조절 및 허혈성 뇌 조직 보호에 특정 효과가 있는 것으로 나타났습니다. [148]. 따라서 TLR4/2는 허혈성 뇌 손상의 치료 표적이 될 수 있습니다.
3. 파이롭토시스와 IS의 관계
대뇌의 병리학 적 메커니즘 국소 빈혈 허혈 후 재관류 손상은 복잡합니다. 이 과정과 관련된 메커니즘에는 염증, 산화 스트레스, 자가포식, 미토콘드리아 기능 장애, 칼슘 과부하 및 프로그램화된 세포 사멸이 포함됩니다. [149], [150], [151]. 다수의 연구에 따르면 프로그램화된 세포 사멸은 뇌 허혈 및 허혈-재관류 손상의 병리학적 과정에서 중요한 역할을 하며, 위의 메커니즘, 특히 발열증과 얽혀 밀접하게 관련되어 있음이 밝혀졌습니다. [152], [153]. 프로그램된 세포 사멸은 뉴런과 관련된 허혈성 뇌졸중의 주요 사건입니다. 소교세포, 성상 세포, 혈관 내피 세포등, 세포사멸과 같은 [154], 자가포식 [155], 프로그램된 괴사 또는 괴사 [156], 페롭토증 [157], 그리고 파이롭토시스 [158]. 특히 파이롭토시스에서는 뇌허혈 랫트 모델에서 NLRP1, ASC, Caspase-1, GSDMD 등 파이롭토시스 관련 단백질의 발현이 증가하며, NLRP1을 억제하면 염증과 뇌의 염증을 완화시킬 수 있다 허혈성 손상. 또한, 만성 뇌허혈이 발생하면 세포는 DAMP와 같은 신호를 방출하여 염증 반응을 촉진합니다. PAMP, 일련의 복잡한 분자 반응을 유발합니다. 이때 소교세포, 성상교세포 등 두개내 신경면역 염증세포가 증식, 활성화되는 것으로 나타나며, 이는 신경혈관 단위를 더욱 손상시킨다. [159], [160], [161].
3.1. 파이롭토시스와 뉴런
IS 이후에는 단시간에 중심 허혈 부위에 괴사가 발생하고, 죽은 세포는 다음과 같은 위험 신호를 방출합니다. HMGB1 단백질, 열충격 단백질, 과산화효소 가족 단백질 등 이러한 위험 신호 분자는 패턴 인식 수용체, 형태 염증복합체, 선천적 면역 반응을 시작하고 신경 세포 사멸을 유발합니다 [162], [163]. 연구에 따르면 뇌허혈이 NLRP1의 높은 발현으로 이어질 수 있음이 확인되었습니다. NLRP3 허혈성 뇌 조직과 뉴런에 존재하며, NLRP1의 활성화는 주로 뉴런에 존재합니다. [164]. 카스파제-1 억제제 또는 면역글로불린 제제를 사용하면 일차 피질 뉴런에서 NLRP1 및 NLRP3의 발현을 약화시키고 크기를 줄일 수 있습니다. 뇌경색, 그 메커니즘은 NF-κB 및 MAPK 경로 활성화의 억제와 관련이 있을 수 있습니다. [164]. IS 마우스에서 Li et al. [165] 뇌허혈 발생 3일째에 신경플라즈마, 핵 및 미토콘드리아 막 발생하였고, Caspase-1, GSDMD 및 IL-1β의 발현이 유의하게 증가하였다. 카스파제-1 억제제 Vx765 파이롭토시스를 억제하고, 허혈성 부위의 뉴런 생존을 촉진하며, 뇌 기능 장애 쥐에서. Lianget al. [166] 는 긴 비코딩 RNA 모체 발현 유전자 3(MEG3)이 AIM2/Caspase-1 경로를 활성화하여 발열증 및 염증 반응을 촉진하여 뇌 허혈-재관류 손상을 일으킨다는 사실을 발견했습니다. MEG3 유전자의 녹아웃은 다음의 발현을 억제할 수 있습니다. AIM2, Caspase-1, GSDMD 및 기타 단백질을 함유하고 허혈성 뇌 손상을 완화합니다. 이는 MEG3가 허혈성 뇌졸중의 효과적인 치료 표적이 될 수 있음을 시사합니다.
3.2. 열분해증과 성상교세포
성상 세포가 가장 풍부합니다. 신경교세포 에서 중추 신경계 혈액-뇌 장벽 형성, 신경 대사 조절 및 세포 간 의사소통 안정화에 관여합니다. [167]. IS 이후 눈에 띄는 병리학적 변화는 반응적입니다. 성상교증 허혈성 손상 후 초기에 신경 가소성을 촉진하는 신경교 흉터 [168]. 일반적으로 다음과 같이 믿어집니다. 해마 허혈이고 저산소증, 항산화 능력 해마의 약화로 인해 수많은 염증인자가 방출되어 해마의 손상이 악화될 수 있습니다. [169]. 국소 뇌 허혈 후 3시간 SD 쥐, IL-1β 유사 면역 반응 양성 세포는 허혈성 부위, 주로 불활성 성상 세포에 나타났습니다. 허혈 후 2개월까지 허혈성 반구, 특히 괴사 병소 주변에서 양성 세포가 여전히 검출될 수 있으며 활성화 정도가 높아집니다. [170]. 활성화된 성상교세포는 다음의 방출을 유도할 수 있습니다. 종양괴사인자, 인터루킨, 성장 인자 및 기타 염증 인자 또는 신경 독성 매개체로 인해 신경 손상이 발생합니다. [171]. NLRP2는 주로 성상교세포에서 발현되지만 뉴런과 소교세포에서는 거의 발현되지 않습니다. 더욱이, NLRP2의 발현은 마우스 대뇌 허혈 모델에서 그리고 성상교세포에서 산소 및 포도당 결핍 후에 상당히 상향조절되었으며, NLRP2를 억제하면 산소 및 포도당 결핍에 의해 유발된 발열증을 감소시킬 수 있었습니다 [172]. 또 다른 연구에서는 뇌 허혈의 시험관 내 모델에서 산소-포도당 결핍이 NLRP3, ASC, Caspase-1, IL-1β 및 IL-18의 증가와 성상교세포 생존의 감소로 이어진다는 사실을 발견했습니다. 히피둘린 에서 분리된 케톤 화합물이다. 한약. 시험관 내 및 생체 내 실험에서 히피둘린은 NLRP3 매개 파이롭토시스를 억제하고 뇌에 보호 효과를 발휘할 수 있으며, 그 메커니즘은 AMPK/GSK-3β의 활성화와 관련이 있는 것으로 나타났습니다. 신호 전달 경로 [173]. Menget al. [174] NLRP6의 발현은 쥐의 뇌 허혈-재관류 후 48시간에 최고조에 도달한다는 것을 발견했습니다. 성상교세포에서 산소 및 포도당 결핍 후 NLRP6 및 그 활성화 생성물의 생성이 증가하고 NLRP6를 억제하면 ASC 및 Caspase-1이 감소하고 염증 인자의 방출이 감소하며 신경 활동이 증가할 수 있습니다. [175]. 따라서 성상교세포의 염증복합체 활성화를 목표로 하는 개입은 IS 치료에 대한 새로운 아이디어를 제공할 수 있습니다.
3.3. 열분해증과 소교세포
소교세포는 타고난 것입니다 면역세포 중추신경계와 허혈성 뇌졸중 후 가장 먼저 활성화되는 세포 [176]. 뇌허혈 손상의 급성기에는 소교세포가 병변 부위로 빠르게 이동하여 염증인자 및 세포독성 물질을 분비하여 조직 손상을 악화시킨다. [177]. 만성 단계에서 소교세포는 항염증성 사이토카인과 성장 인자를 생성하여 조직 복구 그리고 리모델링 [178]. 연구에 따르면 소교세포 발열증은 허혈성 뇌 손상에서 중요한 역할을 하는 것으로 나타났습니다. NLRC4는 소교세포에 3시간 동안 산소와 포도당이 차단되었을 때 유의하게 증가한 최초의 인플라마솜인 반면, NLRP1, NLRP3 및 AIM2는 산소 포도당이 박탈된 6시간 이후까지 유의하게 증가하지 않았습니다. NLRC4를 억제하면 GSDMD, IL-1β 및 IL-18의 생성을 감소시키고 소교세포 파이롭토시스를 억제할 수 있습니다. [179]. Xu et al. [180] 드라이버 수용체 1(TREM-1)이 다음과 같이 표현된다고 보고했습니다. 골수 세포 뇌 허혈-재관류 후 미세아교세포에서 NLRP3/Caspase-1 매개 파이롭토시스 경로를 활성화하고 신경염증 반응을 유도할 수 있습니다. TREM-1의 억제는 소교세포 발열증 및 신경 손상을 감소시킵니다. Li et al. [181] 는 뇌 허혈 후 순환 구아노신 모노포스페이트-아데노신 합성 효소(cGAS)의 발현이 상향 조절되고 AIM2 염증복합체를 활성화하여 소교세포 파이롭토시스를 유도한다는 것을 확인했습니다. cGAS 길항제 A151은 AIM2 활성화 및 소교세포 발열증을 억제하고 뇌경색량을 크게 감소시키며 신경 손상을 완화할 수 있습니다. 위의 연구는 소교세포 파이롭토시스(microglia pyroptosis)와 그 매개 신경염증 반응이 허혈성 뇌 손상을 초래하는 중요한 메커니즘일 수 있음을 나타냅니다. 미세아교세포의 신경독성 효과를 억제하는 것은 허혈성 뇌졸중 치료를 위한 새로운 전략이 될 수 있습니다.
3.4. 파이롭토시스 및 내피 세포
내피 세포는 혈액 뇌 장벽의 첫 번째 장벽을 구성하여 다음을 위한 지지체를 제공합니다. 클라우딘, 접착 분자 그리고 세포외 기질 [182]. 뇌허혈 중에는 면역 염증 반응과 산화 스트레스가 손상될 수 있습니다. 내피 세포 혈액뇌장벽의 완전성을 파괴하여 혈관성 부종, 출혈성 변형 및 사망률 증가를 초래합니다. [183], [184]. 뇌 허혈 후 NLRP3는 뉴런, 소교세포 및 혈관 내피 세포에서 상향 조절되며, NLRP3 유전자를 억제하면 다음과 같은 생쥐의 뇌경색 규모를 줄일 수 있습니다. 중뇌동맥 허혈 및 혈액 뇌 장벽의 투과성을 감소시킵니다. [185]. 왕 외. [186] 대뇌 허혈이 미세혈관 내피 세포의 발열증을 유발하고 허혈-재관류 손상을 악화시킬 수 있음을 확인했습니다. 그들은 또한 퍼옥시좀 증식인자 활성화 수용체 감마 보조활성인자 1α(PGC-1α)의 활성화가 파이롭토시스 관련 단백질의 발현을 크게 감소시키고 ZO-1 및 ZO-1의 발현을 증가시키는 것을 발견했습니다. 오클루딘 뇌 미세 혈관 내피 세포의 단백질을 사용하여 혈액 뇌 장벽의 완전성을 보호합니다. 또한, 뇌 미세혈관 내피세포의 열분해증은 IS 후 출혈 가능성을 증가시켜 다음과 같은 심각한 합병증을 유발할 수 있다는 연구 결과도 있습니다. 뇌출혈 [187].
뇌허혈과 발열증 사이의 연관성은 다음과 같이 요약됩니다. 그림 2.
4. IS 치료를 위한 파이롭토시스 억제제의 가능성
최근 몇 년 동안 IS의 파이롭토시스 억제제에 대한 연구가 많은 주목을 받았습니다. Lianget al. [188] Caspase-1 억제제 VX-765가 Caspase-1, ASC, GSDMD 및 IL-1β를 감소시키면서 수준을 상향 조절할 수 있음을 발견했습니다. 밀착접합 단백질 그리고 메탈로프로테이나제의 조직 억제제, 혈액 뇌 장벽의 무결성을 보호합니다. 또한, VX-765는 소교세포의 M1형에서 M2형으로의 전환을 촉진하고, 소교세포에 의한 염증반응을 감소시키며, 신경보호 효과를 발휘한다. [189], [190]. MCC950은 선택적 NLRP3 억제제이다. 연구에 따르면 MCC950은 허혈성 반그림자에서 NLRP3, Caspase-1 및 IL-1β의 발현을 감소시킬 수 있으며 생쥐의 국소 뇌 허혈에 보호 효과가 있는 것으로 나타났습니다. [191]. 연구에 따르면 일부는 마이크로RNA 뇌허혈 모델에서 발열증을 억제하고 신경보호 역할을 할 수 있음 [192]. LP17은 억제할 수 있습니다 골수세포 수용체-1을 유발하여 산화 스트레스와 발열증을 억제하고 뇌 허혈로 인한 신경 손상을 감소시킵니다. [192]. 히스티딘 아데닐레이트 활성화 단백질 키나제/글리코겐 합성효소 키나제-3β 신호 전달 경로를 조절하여 NLRP3 매개 파이롭토시스를 억제하여 항-CIRI 신경 보호 효과를 발휘할 수 있습니다. [193]. 저밀도 지단백질 수용체는 CIRI 후 NLRP3 매개 신경 파이롭토시스를 억제할 수 있습니다. [194]. 지질 알코올 매개 peroxisome proliferator 활성화 수용체 α-글루타메이트 옥살로아세테이트 트랜스아미나제 1 축은 IS 후 내피 세포의 파이롭토시스를 억제하고 허혈성 뇌 손상을 개선할 수 있습니다 [195]. CHRFAM7A의 과발현은 NLRP3/카스파제-1 경로 의존성 소교세포 파이롭토시스를 억제하고 CIRI를 약화시킬 수 있습니다 [196]. TP53 유발 해당작용 및 세포사멸 조절제는 대뇌 허혈 유발 소교세포 파이롭토시스 및 허혈성 뇌 손상을 완화할 수 있습니다 [197]. 게다가, 엑소솜 저산소성 골수에서 유래 중간엽줄기세포 CIRI로 유발된 신경 발열증을 완화하기 위해 소교세포 M1/M2 표현형을 조절할 수 있습니다. [198]. 저산소증 사전 조건 후각점막 중간엽줄기세포는 저산소증 유발인자-1α를 활성화시켜 뇌허혈로 인한 소교세포의 파이롭토시스(pyroptosis)와 아포토시스(apoptosis)를 억제함으로써 CIRI를 감소시킬 수 있습니다. [199].
pyroptosis의 실행자로서 GSDMD는 IS 치료를 위한 이상적인 분자 표적입니다. 그러나 GSDMD 억제제에 대한 현재 연구는 아직 초기 단계에 있으며, 허혈성 뇌졸중 치료에서 GSDMD 억제제의 효능에 대한 증거가 부족합니다. 최근 연구에 따르면 일부 천연 식물 성분은 파이롭토시스 경로를 조절하여 IS를 치료할 수 있는 것으로 나타났습니다.
5. 천연물은 새로운 발열 억제제로서 IS 치료의 잠재적 후보가 됩니다.
천연물은 다성분, 다표적, 다채널, 저독성 등의 장점으로 인해 뇌경색/뇌허혈-재관류의 예방 및 치료에 상당한 이점을 갖고 있으며, 응용 전망도 좋습니다. 현재 뇌경색/CIRI의 예방 및 치료에 있어 다양한 보호 메커니즘을 포함하는 천연물에 대한 연구가 점차 증가하고 있습니다. 이 섹션에서는 천연물, 동물 또는 세포 모델, 투여 방법, 투여 용량, 치료 시간, 효과 및 치료 메커니즘(신호 전달 경로)을 요약하여 안전하고 효과적이며 독성이 낮은 천연 식물 성분을 신속하게 검색할 수 있는 이론적 근거를 제공합니다. , IS/CIRI의 예방 및 치료를 위해 발열증을 조절합니다.
5.1. 천연 식물 성분
천연 식물 성분의 주요 구조는 다음과 같습니다. 그림 3.
5.1.1. 가스트로딘(GAS)
GAS는 허브에서 추출한 다기능 화합물로, 가스트로디아 엘라타, 다양한 약리학적 활성, 항산화 및 항염증 활성과 같은. 또한 GAS는 카스파제-3 절단, IL-18 및 IL-1β를 비롯한 세포사멸 촉진 인자를 조절하여 뇌허혈-재관류 증상을 크게 감소시키는 것으로 나타났습니다. 여러 연구에 따르면 GAS는 뇌 허혈성 손상을 개선하고 뇌의 수준을 감소시키는 것으로 나타났습니다. 활성산소종 그리고 염증성 사이토카인 생쥐에서 [200], [201], [202]. Luet al. GAS가 NLRP3/caspase-1 축을 표적으로 삼아 심장 미세혈관 허혈-재관류 손상과 관련된 발열증을 개선할 수 있음을 발견했습니다. [203]. GAS는 신경 기능 점수를 매기고 크기를 줄입니다. 뇌경색. 한편, GAS는 NLRP3, 염증 인자(IL-1β, IL-18) 및 절단된 카스파제-1을 하향 조절하여 파이롭토시스를 억제했습니다. 또한 GAS는 lncRNA NEAT1/miR-22-3p 축을 조절하여 허혈-재관류로 유발된 신경 세포 염증을 약화시켰습니다. GAS는 lncRNA NEAT1/miR-22-3p 축을 조절하여 뇌 허혈-재관류 손상을 크게 약화시켰습니다. [204]. 따라서 GAS는 잠재적인 수단으로 사용될 수 있습니다. 의약품 CIRI 치료를 위해
5.1.2. 탄시논 IIA
탄시논 IIA 의 주요 활성 성분입니다 샐비어 miltiorrhiza. 심혈관계 질환 치료에 널리 사용되며, 뇌혈관 질환 항산화 효과와 혈액 순환 개선 효과 때문입니다. Caiet al. [205] 탄시논 IIA는 NLRP3 염증 신호 전달 경로에서 IL-1β 및 IL-18의 발현을 효과적으로 감소시켰으며 그 효과는 용량 의존적이라는 것을 발견했습니다. 이는 탄시논 IIA가 NLRP3 신호 전달 경로의 활성화를 억제함으로써 뇌졸중 후 BV-2 세포의 산소-포도당 결핍/재관류 손상을 감소시킨다는 것을 의미합니다.
5.1.3. 레오누린
레오누린 ~에 레오누리 허브 만성 뇌허혈이 있는 쥐의 학습능력과 기억력을 향상시키고, NLRP3의 발현을 감소시켰습니다. 항염증 효과를 통해 신경을 보호하는 목적을 달성할 수 있을 것으로 추측된다. NLRP3의 활성화는 카스파제-1 전구체의 카스파제-1로의 전환을 촉진하고, IL-1β 및 IL-18의 생성을 촉진시켜 일련의 염증 반응을 일으킨다. 레오누린은 뇌 조직의 염증 반응을 감소시키고, 세포의 파이롭토시스를 억제하여 신경학적 결핍 점수를 감소시키며, 우수한 신경 보호 효과를 나타낼 수 있습니다. [206].
5.1.4. 파오니플로린
파오니플로린 의 주요 구성 요소에서 비롯됩니다. Paeoniae 기수 루브라. Paeoniflorin은 총글루코사이드의 주요 활성 성분입니다. 모란 (TGP), 이는 또한 우수한 항염증 및 면역 조절 활성을 가지고 있습니다. [207]. TGP와 paeoniflorin은 또한 다음과 같은 다양한 약리 활성을 가지고 있습니다. 진경제, 진통제, 그리고 혈관 확장 [208]. Zulifiya Ekemuet al. 급성 뇌 허혈-재관류 후에 뇌의 소교세포와 신경 열분해증의 활성화가 명백하고 NLRP3의 활성화가 증가하며 Caspase-1과 IL-1β가 상향 조절된다는 것을 발견했습니다. [209]. Paeoniflorin은 신경 기능 점수를 크게 감소시켰습니다. 뇌경색 크기, Iba1 발현이 크게 하향 조절되었으며 신경 상태가 크게 개선되었습니다. 또한 paeoniflorin 개입 후 NLRP3, Caspase-1 및 IL-1β의 발현이 유의하게 감소했습니다. Paeoniflorin은 소교세포의 활성화를 감소시키고, 뉴런의 발열증을 억제하며, NLRP3 및 Caspase-1의 활성화를 억제함으로써 ACI 매개 신경학적 손상을 개선할 수 있다고 제안됩니다. [209].
5.1.5. 부틸프탈라이드
엘-부틸프탈라이드는 먼저 유채과 야채 씨앗에서 분리되었으며 나중에 인공적으로 합성될 수 있었습니다. 부틸프탈라이드 재구성할 수 있을 뿐만 아니라 독특한 이중 역할을 가지고 있습니다. 미세 순환 허혈 재관류를 증가시켜서 혈관 구조, 혈관 직경 회복, 허혈성 부위의 혈류량 증가 및 주변 혈관 수 증가 미세혈관뿐만 아니라 미토콘드리아를 보호하고 세포 사멸을 감소시켜 미토콘드리아 구조의 완전성을 보호하고 미토콘드리아 복합 효소 IV의 활성을 향상시키며 미토콘드리아 ATP 효소의 활성을 향상시키고 미토콘드리아의 안정성을 유지합니다. 미토콘드리아 막 [210]. 최신 연구에 따르면 부틸프탈라이드는 NLRP3 인플라마솜 신호 전달 경로를 통해 용량 의존적으로 CIRI 쥐의 발열증에 영향을 미칠 수 있습니다.
5.1.6. 브레비스카핀
브레비스카핀 에서 추출됩니다 Erigeron breviscapus (밴트.) 손. -마즈. 브레비스카핀은 다음의 혼합물입니다. 스쿠텔라린 주로 스쿠텔라린이 함유되어 있으며 소량의 스쿠텔라린이 함유되어 있어 뇌혈관 확장, 뇌혈관 저항 감소, 뇌혈류 증가, 미세순환 개선, 저항작용 등의 기능을 가지고 있습니다. 혈소판 응집. 최근 연구에 따르면 브레비스카핀은 뇌에서 NLRP3 염증 세포의 활성화를 유의하게 억제하는 것으로 나타났습니다. 해마 CCI 쥐의 경우 Caspase 1, IL-6 및 IL-1β 단백질의 발현을 하향 조절하고 Caspase-3 단백질의 활성화를 억제하며 신경 세포 사멸. 이는 브레비스카핀이 CCI 쥐의 인지 기능을 크게 향상시키고 허혈성 뉴런의 병리학적 손상을 감소시킬 수 있음을 시사하며, 그 메커니즘은 뇌 조직의 NLRP3 인플라마솜 활성화 및 파이롭토시스 경로의 억제와 관련이 있을 수 있습니다. [211].
5.1.7. 레스베라트롤
레스베라트롤 비플라보노이드이다 폴리페놀 화합물. 처음으로 뿌리에서 분리되었습니다. 베라트룸 큰꽃, 레스베라트롤은 700개 이상의 식물에서 발견되었습니다. 연구에 따르면 레스베라트롤은 뇌경색에서 산화 스트레스를 조절하고 염증을 억제하며 뇌를 개선하는 데 중요한 역할을 하는 것으로 나타났습니다. 신경보호. 레스베라트롤은 주로 소교세포 NLRP3 염증복합체, Caspase-1 및 ZO-1의 조절을 통해 허혈-재관류 뇌 조직의 발열증을 조절합니다. [212].
5.1.8. 살비아놀산(SAFI)
최근 연구에 따르면 SAFI는 신경학적 결손 점수를 크게 증가시키고 경색량을 감소시키며 조직학적 손상을 약화시키는 것으로 나타났습니다. 대뇌 피질 MCAO/R 모델의 신경 세포 사멸은 신경 세포 생존력을 증가시키고 OGD 모델의 신경 세포 사멸을 감소시킵니다. SAFI는 또한 소교세포 분극 패턴을 M1 유사 표현형에서 M2 유사 표현형으로 리모델링하고 시험관 내 및 생체 내에서 NLRP3 인플라마좀/발산소 관련 단백질의 발현과 NLRP3 인플라마좀의 활성화를 억제했습니다. 이는 SAFI가 신경 세포사멸을 감소시키고, 소교세포 표현형을 M1에서 M2로 이동시키고, 소교세포에서 NLRP3 염증복합체/pyroptotic 축을 억제함으로써 신경 보호 효과를 발휘할 수 있음을 시사합니다. [213].
5.1.9. 히피둘린
히피둘린 는 플라보노이드 다양한 약리학적 특성을 지닌 화합물이며 많은 주요 활성 성분 중 하나입니다. 한약재. 히피둘린은 항산화제, 항진균제, 항종양, 항골다공증, 항염증 및 항돌연변이 특성. 최근 연구에 따르면 히피둘린은 개선된 것으로 나타났습니다. 신경학적 증상 IRI 후 쥐의 경색 크기와 뇌부종. 기계적으로 히피둘린은 AMPK/GSK3β 신호 전달 경로를 조절하여 NLRP3 매개 파이롭토시스를 억제함으로써 생체 내 및 시험관 내에서 신경 보호 효과를 발휘합니다. [214].
5.1.10. 아스트라갈로사이드 IV
황기 기수 결핍을 보충하고 비장과 위를 튼튼하게 하며 혈액순환을 촉진하고 혈액순환을 촉진하며 다음과 같은 증상을 치료할 수 있습니다. 기 결핍 그리고 혈액 결핍 [215]. 아스트라갈로사이드 IV 의 주요 활성 구성 요소 중 하나입니다. 황기 기수 그리고 단위체 구성 요소 복사 뼈 사포닌. 황기의 품질을 테스트하는 표준으로 자주 사용됩니다. [216]. 아스트라갈로사이드 IV에는 다양한 종류가 있습니다. 생물학적 활동, 연구 범위에는 뇌, 간, 심장, 폐, 신장, 위, 내장, 혈관 등 여러 장기 및 조직이 포함됩니다. [217], [218], [219] 항염증, 항바이러스, 항아포토시스, 촉진 등의 생물학적 활성을 가지고 있습니다. 세포 증식, 규제 토끼 질병, 혈당 조절, 노화 지연, 암 억제 [217], [218], [219]. 우리의 이전 연구에서는 아스트라갈로사이드 IV가 IS 치료에 중요한 역할을 하는 잠재적인 신경 보호제임을 확인했습니다. 예를 들어, 혈액뇌관문 보호, 에너지 대사 개선, 신경세포 사멸 억제, 염증반응 억제, 산화스트레스 억제, 신경보호 효과를 발휘하여 뇌허혈을 개선할 수 있습니다. [220], [221], [222]. pyroptosis의 관점에서 Tang et al. 쥐의 뇌 허혈-재관류 동안 NLRP3 인플라마좀이 활성화되었으며, NLRP3 인플라마좀을 억제하거나 그 다운스트림 카스파제-1을 억제하면 쥐 손상에서 뇌 허혈-재관류를 완화할 수 있음을 발견했습니다. [223]. 아스트라갈로사이드 IV는 신경학적 결손 점수를 감소시키고, 뇌경색의 양을 감소시키며, 뇌 조직에서 NLRP3, Caspase-1, pro-IL-1β, IL-1β, pro-IL-18 및 IL-18의 단백질 수준을 감소시킬 수 있습니다. , 인산화된 NF-κB 단백질의 발현을 억제합니다. 이는 아스트라갈로사이드 IV가 항CIRI 효과를 가지며 그 메커니즘이 NF-κB의 억제와 관련이 있을 수 있음을 시사합니다. 단백질 인산화 NLRP3 인플라마좀 활성화 억제 [223]. Li et al. 또한 아스트라갈로시드 IV가 신생아 쥐의 저산소증-허혈로 인한 뇌 손상을 감소시킬 수 있고, 신생아 쥐의 저산소성 허혈성 뇌 조직과 HT22 해마 뉴런의 염증 반응을 억제할 수 있다는 것을 발견했습니다. 이는 MMP-9 매개 NLRP3/를 조절함으로써 발휘될 수 있습니다. Caspase-1 신호 전달 경로 [224].
5.1.11. 파낙스 삼칠인삼 사포닌(PNS)
Notoginseng Radix Et Rhizoma 말린 뿌리이고 뿌리줄기 ~의 파낙스 낫토긴센(버크) 혈액, 심혈관, 신경계 및 면역체계에서 약리학적 활성을 갖는 FH Chen [225], [226]. PNS는 다양한 단량체성 사포닌을 함유하고 있는 주성분으로 설사이통주사제 등의 제제는 심혈관 및 뇌혈관 질환의 예방 및 치료에 널리 사용되고 있습니다. [227]. 우리의 이전 연구와 기존 연구에 따르면 PNS는 다음과 같은 허혈성 뇌 손상에 다양한 약리학적 효과가 있는 것으로 나타났습니다. 항혈전제, 항염증, 항산화, 뇌신경세포 사멸억제, 혈액뇌장벽 손상 개선 [228], [229], [230], [231]. 이는 PNS가 여러 표적을 통해 뇌 허혈에서 보호 역할을 할 수 있음을 시사합니다. 최근 연구에 따르면 PNS는 NLRP3 염증복합체의 활성화를 억제하고 선택적으로 촉진할 수 있는 것으로 나타났습니다. 미토파지 쥐의 대뇌 허혈-재관류 동안. 미토파지의 억제는 NLRP3 인플라마솜에 대한 PNS의 억제 효과를 역전시킬 수 있으며, 이는 미토파지가 뇌 허혈-재관류에서 NLRP3 인플라마솜 활성화에 대한 PNS의 억제 효과를 매개한다는 것을 나타냅니다. 또한, 쥐의 뇌 허혈-재관류 동안 미토콘드리아의 PINK1 및 Parkin 단백질 수준이 증가했으며, PNS는 뇌 조직의 미토콘드리아에서 PINK1 및 Parkin 단백질의 수준을 더욱 증가시킬 수 있습니다. 이는 PNS가 PINK1/Parkin 경로를 통해 뇌 허혈-재관류에서 미토파지를 촉진할 수 있음을 시사합니다. [232]. 요약하면, PNS는 PINK1/Parkin 경로를 통해 선택적으로 미토파지를 촉진하고, 뇌 허혈-재관류에서 NLRP3 염증복합체의 활성화를 억제하고, 뇌 허혈-재관류 손상을 완화합니다.
5.2. 천연 식물 추출물
5.2.1. 타오홍시우탕(THSWD)
THSWD는 혈액 순환을 촉진하고 제거하는 고전적인 처방 중 하나입니다. 혈액 정체, 청나라 Wu Qian의 "황금 거울"이 만든 혈액 정체를 제거하고 새로운 혈액을 재생합니다. 현재 약리학 연구에서는 THSWD의 주요 활성 성분이 다음과 같은 것으로 확인되었습니다. 페룰산, 잇 노란색, 그리고 다당류. 그 중 페룰린산은 혈소판 응집 억제, 항혈전, 항염증, 항산화 등 약리작용이 있다. 잇꽃 황색에는 항 뇌 허혈, 항 심근 허혈, 항 혈전증, 항산화, 항 종양 및 기타 효과가 있습니다. Zhouet al. THSWD는 뇌허혈-재관류 손상 후 신경학적 결손 기능, 뇌경색량 및 뇌 조직 형태를 개선하고 DRP1, NLRP3, Caspase-1 및 IL-1 β 단백질의 수준을 크게 감소시키는 것으로 나타났습니다. [233]. 이는 뇌경색에 대한 THSWD의 치료 효과가 발열증과 관련된 DRP1/NLRP3 경로의 억제와 관련이 있음을 나타냅니다. 추가 연구에 따르면 THSWD 그룹에서 IL-1β 및 IL-18의 함량이 크게 감소했으며 NLRP3, Caspase-1, Caspase-1 p10, ASC, TXNIP 및 GSDMD 수준이 감소한 것으로 나타났습니다. 신호전달 경로의 검출은 THSWD가 HMGB1/RAGE, TLR4/NF-κB, p38 맵 반그림자에는 JNK가 있습니다. 요약하면, THSWD는 MCAO/R 쥐의 염증 반응 수준을 감소시키고 MCAO/R 쥐의 NLRP3 염증복합체 활성화를 억제하며 GSDMD를 하향 조절합니다. THSWD는 HMGB1/TLR4/NF-kB 및 MAPK 신호 전달 경로를 억제함으로써 영향을 받을 수 있는 발열증을 억제하는 효과가 있습니다. [234].
5.2.2. 나오신칭 캡슐(NXQC)
NXQC의 주성분은 디오스피로스 카키 툰브(감잎). 연구에 따르면 감잎 추출물에는 플라보노이드, 유기산 및 쿠마린 항염증, 항산화 효과가 있는 기타 화학 물질, 항고혈압제, 혈중 지질 저하, 개선 혈관 평활근 기능과 혈역학적 기능. 이 약물은 심혈관 및 뇌혈관 질환 치료에 널리 사용되어 왔습니다. [235], [236], [237]. 기존 연구에 따르면 NXQC는 효과적으로 개선할 수 있는 것으로 나타났습니다. 뇌동맥경화증 뇌허혈로 인한 신경 손상을 보호합니다. [238]. Min et al. NXQC는 뇌허혈 후 학습 능력 저하를 효과적으로 개선하고 뇌의 활동을 증가시킬 수 있음을 발견했습니다. 과산화물 제거효소 그리고 젖산탈수소효소, GSH의 함량을 높이고, 말론디알데히드. NXQC는 또한 해마에서 ASC, NLRP3 및 Caspase-1 단백질을 하향조절하고 IL-18 및 IL-1β 함량을 크게 감소시킬 수 있습니다. 그들은 또한 저빌의 혈소판 내피 세포 부착 분자-1 양성 세포가 NXQC 개입 후 유의하게 증가했다는 것을 발견했습니다. 세포간 접합 빡빡했어요. NXQC는 형태를 효과적으로 보호할 수 있다고 제안됩니다. 해마 CA1 영역 저빌의 뇌혈관 기능을 보호하고 뇌허혈-재관류 손상을 억제합니다. [239].
5.2.3. 부양환오탕(BYHWD) 및 그 변형물
BYHWD는 유명합니다 전통적인 중국 약 뇌졸중 치료에 사용되는 공식. 처방은 청나라 왕청인(王慶仁)의 『의학교정』에 처음으로 기록되어 있다. [240], [241]. 기를 자양하고 혈액을 활성화시키는 처방의 탁월한 대표자입니다. 기(氣)를 튼튼하게 하고 혈액순환을 촉진하며 곁가지를 준설하는 기능이 있습니다. 증거 기반 의학 연구를 통해 우수한 임상 효과가 나타났습니다. [242], [243]. 이전 연구에 따르면 BYHWD는 배당체 신경 기능 장애를 개선하고 신경 손상을 줄이며 신경 발열증을 억제할 수 있습니다. BYHWD 배당체는 BYHWD에서 추출된 활성 성분으로 주로 아스트라갈로사이드 IV, 파오니플로린 및 아미그달린. 신장을 튼튼하게 하고 혈액을 활성화시키는 주요 약리활성성분으로 뇌허혈성 신경손상을 치료할 수 있습니다. [244]. 또한, 우리는 BYHWD 글리코시드가 NLRP3 매개 표준 파이롭토시스 경로의 NLRP3, ASC, pro-caspase-1, caspase-1 및 IL-1β 단백질의 발현을 유의하게 억제한다는 것을 관찰했습니다. [209]. 요약하면, BYHWD 배당체는 CIRI 이후의 신경 파이롭토시스를 억제함으로써 신경 보호 효과를 발휘하는데, 이는 NLRP3에 의한 고전적 파이롭토시스 경로의 조절과 밀접한 관련이 있습니다. 게다가 롱즈 달임 는 BYHWD가 거머리와 아키란테스 시추안시스. 수년 동안 급성 뇌졸중의 임상 치료에 사용되어 왔으며 효과가 매우 좋습니다. [245]. 최근 연구에 따르면 Longzhi 달임은 CIRI 후 쥐의 신경 증상을 개선하고 뇌 조직의 신경 세포 상태를 유지하며 뇌경색의 양을 줄이는 데 명백한 효과가 있는 것으로 나타났습니다. 세포 발열의 개입 측면에서 Longzhi Decoction은 CIRI 후 쥐의 증상을 개선하고 보호할 수 있습니다. 신경 세포 손상 Caspase-1 및 IL-18 단백질의 발현을 하향 조절하여 손상 후 [245].
5.2.4. Yiqi Huoxue 처방(YQHXP)
YQHXP는 다음으로 구성됩니다. 안젤리카에 시넨시스 기수, 황기 기수, Chuanxiong Rhizoma, 전갈자리, Leonuri Herba, Acori Tatarinowii Rhizoma, Borneolum Syntheticum, 좋은 임상 결과를 얻었습니다 [246]. 동물 연구에 따르면 YQHXP는 쥐의 신경 기능 점수와 뇌경색 비율을 개선하고 뇌 조직에서 IL-1β, TNF-α 및 IL-18의 수준과 IL-18의 상대적 발현을 감소시키는 것으로 나타났습니다. P2RX7, 대뇌 허혈성 반음영 조직의 Caspase-1, Caspase-11 및 GSDMD. YQHXP 개입 후 뇌 조직의 염증성 삼출 및 부종이 크게 감소했으며 세포 형태 및 신경 액포 변성이 개선되었습니다. 요약하면, YQHXP는 발열증을 억제하여 급성 허혈성 뇌졸중 쥐의 뇌 조직 염증을 감소시킬 수 있습니다 [247].
5.2.5. 션나오푸위안 달임(SNFYD)
SNFYD는 신장과 뇌의 동시치료 이론을 바탕으로 허혈성 뇌졸중에 효과적인 처방이다. 그 구성은 다음과 같습니다: 황기 기수 30g, 레흐마니아에 기수 프라에파라타 10g, 코르니 프럭투스 10g, Dioscoreae Rhizoma 15g, Rhodiolae Crenulatae Radix Et Rhizoma 20g, 무탄피질 10g, 안젤리카에 시넨시스 기수 10g, Paeoniae Radix Rubra 10g, 페레티마 10g [248]. 그것은 혈액을 활성화하고 담보를 준설하는 것과 결합된 많은 기 활력, 정액 보충 및 신장 활력 약품과 결합됩니다. 연구에 따르면 OGD 모델링 후 PC12가 크게 손상되었으며 파이롭토시스 경로의 다양한 사이토카인이 크게 증가한 것으로 나타났습니다. [249]. SNFYD 함유 혈청과 INF39가 손상된 부위에 개입한 후 PC12 세포PC12 세포의 형태와 활성이 개선되었고, 이에 따라 NLRP3/Caspase-1 파이롭토시스 경로의 활성화가 약화되었습니다. 이는 이 경로의 억제가 세포 상태의 개선과 관련되어 있으며 SNFYD와 INF39 모두 이 경로의 활성화를 억제할 수 있음을 나타냅니다. SNFYD는 NLRP3/Caspase-1 및 하류 파이롭토시스 경로를 억제함으로써 신경세포의 염증성 세포사멸을 감소시켜 신경조직을 보호하고 뇌경색 치료 목적을 달성할 수 있음을 시사합니다. [250].
5.2.6. 기타 추출물
또한, 최근 연구에서는 헤파린과 같은 항혈전제가 파이롭토시스를 억제하여 폐 손상을 개선할 수 있는 것으로 나타났습니다. 예를 들어, Yang et al. 헤파린은 패혈증으로 인한 폐 손상을 치료할 수 있는 잠재적인 방법일 수 있는 hMGB1 LPS로 유발된 카스파제-11 활성화를 차단하여 폐 내피 세포의 세포사멸을 억제한다는 사실을 발견했습니다 [251]. Prathapanet al. 부드러운 코코넛 물에는 항산화 및 항혈전 효과가 있다는 사실이 발견되었습니다. 실험적 심근경색 모델 [252], 어린 코코넛 주스는 다음과 관련된 일부 병리 현상을 크게 줄일 수 있습니다. 알츠하이머병 [253]. 코코넛 워터는 잠재적인 파이롭토시스 억제제일 수 있으며 IS에서 파이롭토시스를 조절하는 역할은 향후 연구될 수 있습니다.
엘-아르기닌은 유기 화합물로 존재합니다. 프로타민 대량으로 [254]. 합성의 전조이다. 산화질소 (NO)는 혈관의 온전한 내피를 보호하는 역할을 합니다. 혈관확장제 및 내인성 항동맥경화 분자 [254], [255]. 동물 실험에서는 다음과 같은 사실을 보여줍니다. 엘-아르기닌에는 복합체가 있을 수 있습니다. 항응고, 항응고 및 섬유소분해 효과 [255], [256]. 고혈압 쥐에서 Cylwik et al. 그것을 발견 엘-아르기닌은 쥐의 혈압을 감소시킬 수 있었고, 장기간 치료는 유글로불린 혈전 용해 시간과 출혈 시간을 단축시키고 콜라겐 유발 혈소판 응집을 억제했습니다. 다음과 같이 제안됩니다. 엘- 아르기닌은 고혈압 쥐 모델에서 항혈전 효과를 나타냅니다. 정맥 혈전증 복잡한 방식으로 [256]. 최근 연구에 따르면 엘-아르기닌은 발열증의 잠재적인 억제제일 수 있습니다: Tanuseputero et al. 제안했다 엘-아르기닌은 패혈증 유발을 완화하기 위해 NLRP3 염증복합체를 부분적으로 억제할 수 있습니다. 급성 신장 손상 생쥐에서 [257]. 혈관 확장, 항혈전 및 NLRP3 염증복합체 활성 억제를 고려하여 엘-아르기닌은 다음과 같이 권장됩니다. 엘-아르기닌은 허혈성 부위의 혈류를 증가시키고 IS의 발열증을 억제할 가능성이 있습니다.
pyroptosis를 조절하는 천연 제품의 요약은 다음과 같습니다. 표 2.
표 2. 파이롭토시스를 조절하는 천연 화합물의 요약.
천연제품 | 모델/질병 | 종 | 효과 | 참조 |
---|---|---|---|---|
가스트로딘 | 중대뇌동맥 폐쇄/재관류(MCAO/R), 산소-포도당 박탈/재산소화(OGD/R) | Rattus norvegicus 및 Rattus norvegicus의 원추 피질 뉴런 | NLRP3, 염증 인자(IL-1β, IL-18) 및 절단된 카스파제-1을 하향 조절하여 파이롭토시스를 억제합니다. lncRNA NEAT1/miR-22-3p 축 및 lncRNA NEAT1/miR-22-3p 축을 조절합니다. | [204] |
탄시논 IIA | OGD/R | BV2 세포(Mus musculus의 소교세포) | NLRP3 염증 신호 전달 경로에서 IL-1β 및 IL-18의 발현을 감소시킵니다. | [205] |
레오누린 | MCAO | Rattus norvegicus | NLRP3의 발현을 감소시킵니다. | [206] |
파오니플로린 | MCAO | Rattus norvegicus | NLRP3, Caspase-1 및 IL-1β 수준을 억제합니다. | [209] |
부틸프탈라이드 | MCAO | Rattus norvegicus | NLRP3 인플라마솜 신호 전달 경로 조절 | [210] |
브레비스카핀 | MCAO/R | Rattus norvegicus | CCI 쥐의 해마에서 NLRP3 염증 세포의 활성화를 억제하고 Caspase 1, IL-6 및 IL-1β 단백질의 발현을 하향 조절하고 Caspase-3 단백질의 활성화를 억제합니다. | [211] |
레스베라트롤 | MCAO/R | Rattus norvegicus | 소교세포 NLRP3 염증복합체, Caspase-1 및 ZO-1을 조절합니다. | [212] |
살비아놀산 | MCAO/R 및 OGD/R | Rattus norvegicus의 Rattus norvegicus 및 소교세포 | NLRP3 인플라마솜의 활성화와 NLRP3 인플라마솜/발산소 관련 단백질의 발현을 억제합니다. | [213] |
히피둘린 | MCAO | Rattus norvegicus | AMPK/GSK3β 신호 전달 경로를 조절하여 NLRP3 매개 파이롭토시스를 억제합니다. | [214] |
아스트라갈로사이드 IV | MCAO/R | Rattus norvegicus | NLRP3 염증복합체의 활성화를 억제합니다. 뇌 조직에서 NLRP3, Caspase-1, pro-IL-1β, IL-1β, pro-IL-18 및 IL-18의 단백질 수준을 감소시킵니다. 인산화된 NF-κB 단백질의 발현을 억제합니다. | [223] |
파낙스 삼칠인삼 사포닌 | MCAO/R | Rattus norvegicus | PINK1/Parkin 경로를 조절합니다. NLRP3 인플라마솜의 활성화를 억제합니다. | [232] |
도홍시우탕 | MCAO | Rattus norvegicus | DRP1, NLRP3, Caspase-1 및 IL-1 β 단백질의 수준을 감소시킵니다. | [233] |
도홍시우탕 | MCAO/R | Rattus norvegicus | HMGB1/TLR4/NF-kB 및 MAPK 신호 전달 경로를 억제합니다. | [234] |
나오싱칭 캡슐 | MCAO/R | Meriones unguiculatus | ASC, NLRP3 및 Caspase-1 단백질을 하향 조절합니다. IL-18 및 IL-1β 함량을 감소시킵니다. | [239] |
부양환오탕 | MCAO/R | Rattus norvegicus | NLRP3 매개 표준 파이롭토시스 경로의 NLRP3, ASC, pro-caspase-1, caspase-1 및 IL-1β 단백질의 발현을 억제합니다. | [244] |
롱즈 달임 | MCAO/R | Rattus norvegicus | Caspase-1 및 IL-18 단백질의 발현을 하향 조절합니다. | [245] |
Yiqi Huoxue 처방전 | MCAO | Rattus norvegicus | IL-1β, TNF-α 및 IL-18의 수준과 P2RX7, Caspase-1, Caspase-11 및 GSDMD의 상대적 발현을 감소시킵니다. | [247] |
션나오푸위안 달임 | OGD | Rattus norvegicus의 PC12 세포 | NLRP3/Caspase-1을 억제합니다. | [250] |
6. 전망
우리 연구팀은 IS 이후 혈관 신경 단위의 다양한 세포 그룹(예: 뉴런, 미세아교세포, 성상교세포)의 프로그램된 세포 사멸 모드를 오랫동안 연구해 왔습니다. 다른 연구 보고서와 결합하여 우리는 IS 이후에 apoptosis, ferroptosis 및 autophagy와 같은 다양한 세포 사멸 모드가 발생했으며 apoptosis와 pyroptosis의 형태가 특정 유사점을 가지고 있음을 발견했습니다. 신경염증 IS 다음은 뇌손상으로 이어지는 가장 중요한 병리학적 과정이며, 여기서 파이롭토시스는 신경염증의 중요한 부분입니다. 이는 뇌허혈 후 신경염증 관련 프로그램화된 세포 사멸에 파이롭토시스가 비정상적으로 중요하다는 것을 시사합니다. 파이롭토시스에 의해 유발되는 관련 신호 전달 경로는 다른 프로그램된 세포 사멸 경로와도 교차하며, 이는 파이롭토시스를 표적으로 하는 약물 개발이 IS를 치료하는 중요한 방법임을 시사합니다.
현재 연구에는 여전히 개선이 필요한 영역이 있습니다. (1) 현재 연구의 동물 모델에서 정상화 및 통일 문제로 인해 다양한 세포의 파이롭토시스에 대한 결론이 내려졌습니다. 신경계 일관성이 없습니다. 따라서 향후 파이롭토시스에 대한 연구에서는 허혈성 뇌졸중 동물 모델에서 보다 표준화되고 통일된 안정적인 모델이 필요하며, 이는 또한 항파이롭토시스 약물의 실제 효과를 결정할 수 있습니다. (2) 향후 연구를 통해 천연 화합물의 장기적인 뇌 보호 효과와 다양한 설치류 및 대형 포유류 뇌졸중 모델에서 발열증을 조절하는 메커니즘을 확인할 수 있습니다. 앞으로는 더 많은 관심을 기울여야 할 것입니다. 약동학, 약력학, 현재 파이롭토시스를 조절하는 천연 화합물의 독성학적 특성. (3) 또한, 뇌허혈성 뇌졸중에서 발열증 조절에 있어서 천연 화합물의 조합의 시너지 효과와 신경염증을 억제하는 신경보호 효과에 대한 향후 연구가 필요하다. (4) 모든 결과가 긍정적이면 다음 단계는 다음을 수행하는 것입니다. 임상 시험 잠재력의 식물화학물질 뇌 허혈/뇌졸중에 대한 신경 보호 효과를 조사하기 위해(예를 들어, 팀은 현재 뇌 소혈관 질환 치료에 Naotai Fang의 임상 시험을 수행하고 있습니다: ChiCTR1900024524).
7. 요약
전 염증성 프로그램 세포 사멸인 파이롭토시스는 주로 Caspase-1에 의해 매개되는 고전적인 파이롭토시스 경로를 통해 세포 사멸과 신경염증을 유도함으로써 허혈성 뇌졸중의 병리학적 과정에서 중요한 역할을 합니다. 비표준 pyroptotic 경로와 IS 사이의 관계는 아직 밝혀지지 않았습니다. pyroptosis에 대한 다른 메커니즘은 향후 추가 연구가 필요합니다. 현재 연구 결과에 따르면 약물 타겟팅 파이롭토시스 경로의 주요 단백질은 허혈성 뇌 손상을 어느 정도 완화할 수 있지만, 이들의 연구는 주로 세포 및 동물 실험에 국한되어 있으며, 부족한 부분이 있습니다. 임상 연구 증거. 따라서 IS에서 발열증의 조절 메커니즘을 탐구하기 위한 추가 임상 연구는 허혈성 뇌졸중의 예방 및 치료를 위한 새로운 치료 전략과 이론적 기초를 제공할 것으로 기대됩니다. 천연 화합물에 의한 파이롭토시스 조절과 관련하여, 우리의 일반화를 통해 천연 식물 화합물이 단일 성분뿐만 아니라 파이롭토시스를 조절함으로써 뇌 허혈을 조절할 수 있음을 알 수 있습니다. 다성분 천연 식물 화합물은 또한 파이롭토시스에 의해 유발되는 염증 연쇄반응을 조절하는 데 잠재적인 시너지 효과를 나타내는 것으로 볼 수 있습니다. 이는 미래에 다양한 신호 전달 경로로 인해 발생하는 발열증 매개 신경염증에 대한 다양한 천연 화합물의 규제 효과를 연구하도록 영감을 줍니다.
CRediT 저자 기여 선언문
양 카이린: 개념화, 방법론, 형식적 분석, 조사, 집필 – 원본 초안; 젱 류팅: 개념화, 방법론, 소프트웨어, 형식적 분석, 조사, 글쓰기 – 원본 초안; 진송 젱: 방법론, 공식 분석, 조사; 팅팅 바오: 방법론, 형식적 분석, 조사, 집필 – 원본 초안; 샤오위안: 방법론, 공식 분석, 조사; 왕 산샨: 방법론, 공식 분석, 조사; 왕샹: 방법론, 공식 분석, 조사; 하오 쉬: 방법론, 공식 분석, 조사; 진웬 게: 개념화, 방법론, 형식적 분석, 조사, 집필 – 검토 및 편집.
이해 상충 진술서
저자는 이 문서에 보고된 작업에 영향을 미칠 수 있는 경쟁적인 금전적 이해관계나 개인적인 관계가 없다고 선언합니다.
감사의 말
이 작품은 에서 지원을 받습니다. 중국 국립자연과학재단 (81774174), 중국 국가중점 연구개발 프로젝트 (아니요. 2018YFC1704904), 후난성 국립자연과학재단, 중국 (2020JJ5424 그리고 2020JJ5442), 후난중의과대학교 한의학과 서양의학을 통합한 “이중 일류” 학문 공개 기금 프로젝트 (2020ZXYJH08 그리고 2020ZXYJH09), 후난성 교육부 청소년 기금 프로젝트 (21B0386).
데이터 및 자료의 가용성
이 연구 결과를 뒷받침하는 데 사용된 데이터는 기사에 포함되어 있습니다.
참고자료
- [1]
LE 에반스, JL 테일러, CJ 스미스, HAT 프리차드, AS 그린스타인, SM 앨런심혈관 동반질환, 염증, 뇌소혈관질환Cardiovasc Res., 117 (13) (2021), pp. 2575-2588, 10.1093/cvr/cvab284
이 글은 무료로 보실 수 있습니다.
- [2]
P. Han, W. Zhang, L. Kang, Y. Ma, L. Fu, L. Jia, H. Yu, X. Chen, L. Hou, L. Wang, X. Yu, M. Kohzuki, Q. 궈뇌졸중에 대한 운동의 이점에 대한 임상적 증거고급 특급. 메드. Biol., 1000(2017), pp. 131-151, 10.1007/978-981-10-4304-8_9
- [3]
VL Feigin, M. Brainin, B. Norrving, S. Martins, RL Sacco, W. Hacke, M. Fisher, J. Pandian, P. Lindsay세계뇌졸중기구(WSO): 2022년 글로벌 뇌졸중 사실 자료국제 J. 뇌졸중, 17(1)(2022), 18-29페이지, 10.1177/17474930211065917
이 글은 무료로 보실 수 있습니다.
- [4]
PB Sporns, HJ Fullerton, S. Lee, H. Kim, WD Lo, MT Mackay, M. Wildgruber어린 시절의 뇌졸중Nat. 목사 Dis. Prim., 8(1)(2022), p. 12, 10.1038/s41572-022-00337-x
- [5]
MY Wu, GT Yiang, WT Liao, AP Tsai, YL Cheng, PW Cheng, CY Li, CJ Li허혈 및 재관류 손상의 현재 메커니즘 개념Cell PhysiolBiochem, 46 (4) (2018), pp. 1650-1667, 10.1159/000489241
이 글은 무료로 보실 수 있습니다.
- [6]
K. 퓨리뇌졸중의 역학 및 일차 예방계속. (Minne), 26(2)(2020), pp. 260-267, 10.1212/CON.0000000000000831
- [7]
MS Ekker, EM Boot, AB Singhal, KS Tan, S. Debette, AM Tuladhar, FE de Leeuw젊은 성인의 허혈성 뇌졸중의 역학, 병인학 및 관리Lancet Neurol., 17 (9) (2018), pp. 790-801, 10.1016/S1474-4422(18)30233-3
- [8]
S. Wu, B. Wu, M. Liu, Z. Chen, W. Wang, CS Anderson, P. Sandercock, Y. Wang, Y. Huang, L. Cui, C. Pu, J. Jia, T. Zhang , X. Liu, S. Zhang, P. Xie, D. Fan, X. Ji, KL Wong, L. Wang중국 뇌졸중 연구 협력. 중국의 뇌졸중: 역학, 예방 및 관리 분야의 발전과 과제Lancet Neurol., 18 (4) (2019), pp. 394-405, 10.1016/S1474-4422(18)30500-3
- [9]
HF Yan, QZ Tuo, QZ Yin, P. Lei허혈/재관류 관련 손상에서 페롭토시스의 병리학적 역할동물원. 결의안, 41 (3) (2020), pp. 220-230, 10.24272/j.issn.2095-8137.2020.042
- [10]
MY Wu, GT Yiang, WT Liao, AP Tsai, YL Cheng, PW Cheng, CY Li, CJ Li허혈 및 재관류 손상의 현재 메커니즘 개념Cell PhysiolBiochem, 46 (4) (2018), pp. 1650-1667, 10.1159/000489241
이 글은 무료로 보실 수 있습니다.
- [11]
X. Li, N. Ma, J. Xu, Y. Zhang, P. Yang, X. Su, Y. Xing, N. An, F. Yang, G. Zhang, L. Zhang, Y. XingFerroptosis의 표적화: 허혈-재관류 손상의 병리학적 메커니즘 및 치료산화물. Med Cell Longev., 2021(2021), 조항 1587922, 10.1155/2021/1587922
- [12]
M. Mahjoubin-Tehran, S. Rezaei, A. Jesmani, N. Birang, K. Morshedi, H. Khanbabaei, H. Khan, A. Piranviseh, M. Nejati, M. Aschner, H. Mirzaei뇌졸중 발병의 새로운 후성유전적 역할: 비코딩 RNA에서 엑소좀 비코딩 RNA까지바이오메드. Pharm., 140 (2021), 조항 111753, 10.1016/j.biopha.2021.111753
- [13]
K. Yang, L. Zeng, A. Ge, S. Wang, J. Zeng, X. Yuan, Z. Mei, G. Wang, J. Ge뇌경색/허혈-재관류 손상 시 신경염증 및 면역조절에 있어서 non-coding RNA의 연구 진행 상황을 체계적으로 고찰앞쪽. Immunol., 13(2022), 조항 930171, 10.3389/fimmu.2022.930171
- [14]
K. Yang, L. Zeng, X. Yuan, S. Wang, A. Ge, H. Xu, J. Zeng, J. Ge허혈성 뇌졸중에서 산화스트레스를 조절하는 페로프토시스의 기전과 천연약리활성성분의 조절기전바이오메드. Pharm., 154 (2022), 조항 113611, 10.1016/j.biopha.2022.113611
- [15]
PJ 켈리, R. Lemmens, G. Tsivgoulis염증 및 뇌졸중 위험: 예방을 위한 새로운 목표뇌졸중, 52 (8) (2021), pp. 2697-2706, 10.1161/STROKEAHA.121.034388
- [16]
D. Levard, I. Buendia, A. Lanquetin, M. Glavan, D. Vivien, M. Rubio뇌졸중 연구의 공백 메우기: 염증과 면역에 초점뇌 행동. Immun., 91(2021), pp. 649-667, 10.1016/j.bbi.2020.09.025
- [17]
J. 시, W. 가오, F. 샤오열분해증: 가스더민 매개 프로그램 괴사성 세포 사멸Trends Biochem Sci., 42 (4) (2017), pp. 245-254, 10.1016/j.tibs.2016.10.004
- [18]
Y. Fang, S. Tian, Y. Pan, W. Li, Q. Wang, Y. Tang, T. Yu, X. Wu, Y. Shi, P. Ma, Y. Shu파이롭토시스(Pyroptosis): 암의 새로운 개척지바이오메드. Pharm., 121 (2020), 조항 109595, 10.1016/j.biopha.2019.109595
- [19]
YS Feng, ZX Tan, LY Wu, F. Dong, F. Zhang신경퇴행성 질환 치료에 NLRP3 인플라마솜의 관여바이오메드. Pharm., 138 (2021), 조항 111428, 10.1016/j.biopha.2021.111428
- [20]
J. Chen, Z. Wei, K. Fu, Y. Duan, M. Zhang, K. Li, T. Guo, R. Yin난소암의 비세포사멸 세포사: 치료, 저항성 및 예후바이오메드. Pharm., 150 (2022), 조항 112929, 10.1016/j.biopha.2022.112929
- [21]
K. Du, M. He, D. Zhao, Y. Wang, C. Ma, H. Liang, W. Wang, D. Min, L. Xue, F. Guo간질중첩증의 세포사멸 경로 메커니즘 및 관련 치료제바이오메드. Pharm., 149 (2022), 조항 112875, 10.1016/j.biopha.2022.112875
- [22]
X. Gou, D. Xu, F. Li, K. Hou, W. Fang, Y. Li뇌졸중의 열병증 - 질병 메커니즘 및 치료 전략에 대한 새로운 통찰력J. PhysiolBiochem, 77(4)(2021), pp. 511-529, 10.1007/s13105-021-00817-w
- [23]
A. Ye, W. Li, L. Zhou, L. Ao, W. Fang, Y. Li허혈성 뇌졸중 손상을 조절하기 위한 발열증의 표적화: 분자 메커니즘 및 전임상 증거Brain Res Bull., 165(2020), 페이지 146-160, 10.1016/j.brainresbull.2020.10.009
- [24]
B. Tang, X. She, CQ Deng대뇌 허혈-재관류 쥐 모델에서 아스트라갈로사이드 IV와 삼칠인삼 사포닌의 조합이 발열증 및 괴사에 미치는 영향특급. 거기. Med, 22(4)(2021), p. 1123, 10.3892/etm.2021.10557
- [25]
Y. She, L. Shao, Y. Zhang, Y. Hao, Y. Cai, Z. Cheng, C. Deng, X. Liu쥐의 뇌허혈-재관류 손상 후 발열증에 대한 부양환오탕의 배당체의 신경보호 효과J. Ethnopharmacol., 242(2019), 조항 112051, 10.1016/j.jep.2019.112051
- [26]
Tang Biao, Tang Wenjing, Dai Ziwei, She Xu, Deng Changqing. 인삼 사포닌은 SH-SY5Y 세포의 저산소증-저혈당/재산소화 및 재혈당 유발 파이롭토시스를 억제합니다. 중국 병태생리학 저널, 2020, 36 (07):1178–1184.(중국어).
- [27]
리신세포 발열 메커니즘을 기반으로 저혈당 및 저산소증이 있는 PC12 세포에 대한 신나오 푸위안 달임의 보호 효과 탐색 [D]후난대학교 전통. 턱. 메드. (2019), 10.27138/d.cnki.ghuzc.2019.000152(중국어로)
- [28]
S. Xia, P. Yang, F. Li, Q. Yu, W. Kuang, Y. Zhu, J. Lu, H. Wu, L. Li, H. Huang차이후롱구물리달임은 해마 신경세포의 파이롭토시스를 개선하여 쥐의 항간질 효과를 나타냅니다.J. Ethnopharmacol., 270(2021), 조항 113794, 10.1016/j.jep.2021.113794
- [29]
L. Galluzzi, I. Vitale, SA Aaronson, 외.세포 사멸의 분자 메커니즘: 2018년 세포 사멸 명명법 위원회의 권장 사항Cell Death Different., 25 (2018), pp. 486-541
이 글은 무료로 보실 수 있습니다.
- [30]
R. 싱, A. 레타이, K. 사로시크건강과 질병의 세포사멸 조절: BCL-2 계열 단백질의 균형 작용Nat. 몰 목사. Cell Biol., 20(2019), pp. 175-193
- [31]
P. Yu, X. Zhang, N. Liu, L. Tang, C. Peng, X. ChenPyroptosis : 메커니즘 및 질병신호 전달. Target Ther., 6(1)(2021), p. 128, 10.1038/s41392-021-00507-5
이 글은 무료로 보실 수 있습니다.
- [32]
X. Chen, WT He, L. Hu, 외.Pyroptosis는 비선택적인 gasdermin-D 기공에 의해 유발되며 그 형태는 MLKL 채널 매개 괴사와 다릅니다Cell Res, 26(2016), pp. 1007-1020
이 글은 무료로 보실 수 있습니다.
- [33]
D. Tang, R. Kang, TV Berghe, P. Vandenabeele, G. Kroemer조절된 세포 사멸의 분자 기계Cell Res, 29(5)(2019), pp. 347-364
이 글은 무료로 보실 수 있습니다.
- [34]
EA 미아오, DP 마오, N. Yudkovsky, 외.NLRC4 inflammasome을 통한 III형 분비기관의 선천면역 검출진행 Natl. Acad. Sci., 107(7)(2010), pp. 3076-3080
- [35]
W. Shao, G. Yeretssian, K. Doiron, SN Hussain, M. Saleh카스파제-1 다이제톰은 감염 및 패혈성 쇼크 동안 해당과정 경로를 표적으로 식별합니다.J. Biol. Chem., 282(50)(2007), pp. 36321-36329
- [36]
Y. 왕, W. 가오, X. 시, 외.화학요법 약물은 가스더민의 카스파제-3 절단을 통해 파이롭토시스를 유도합니다.자연, 547(7661)(2017), pp. 99-103
- [37]
PE Czabotar, G. Lessene, A. Strasser, JM AdamsBCL-2 단백질군에 의한 세포사멸의 조절: 생리학과 치료에 대한 함의자연 목사 Mol. Cell Biol., 15(1)(2014), pp. 49-63
- [38]
S. Goldar, MS Khaniani, SM Derakhshan, B. Baradaran세포 사멸의 분자 메커니즘과 암 발생 및 치료에서의 역할아시아팩. J. Cancer Prev., 16(6)(2015), pp. 2129-2144
- [39]
A. 데라크샨, Z. 첸, C. 반 웨스외인성 및 내인성 세포 사멸 경로의 조절이 완화된 암에서 세포사멸 단백질의 억제제를 표적으로 하는 치료용 소분자클린. Cancer Res., 23 (6) (2017), pp. 1379-1387
- [40]
A. 링커만, DR 그린괴사증N.Engl. J. Med., 370(5)(2014), pp. 455-465
- [41]
JM 머피, PE Czabotar, JM Hildebrand, 외.슈도키나제 MLKL은 분자 스위치 메커니즘을 통해 괴사를 매개합니다.면역, 39(3)(2013), 443-453페이지
- [42]
S. 풀다대체 세포 사멸 경로 및 세포 대사국제 J. Cell Biol., 2013(2013), 조항 463637
- [43]
Y. 장, X. 첸, C. Gueydan, J. 한프로그램된 세포 사멸 동안 원형질막 변화Cell Res, 28(1)(2018), pp. 9-21
- [44]
SJ 딕슨, BR 스톡웰세포사멸에서 철분과 활성산소종의 역할Nat. 화학. Biol., 10 (2014), pp. 9-17, 10.1038/nchembio.1416
- [45]
Bogdan AR, Miyazawa M., Hashimoto K., Tsuji Y. 철 항상성 조절자: 대사, 세포 사멸 및 질병의 새로운 플레이어.
- [46]
B. 라이, CH 우, CY 우, SF 루오, JH 라이Ferroptosis 및자가 면역 질환Front Immunol., 13(2022), 조항 916664, 10.3389/fimmu.2022.916664PMID: 35720308; PMCID:PMC9203688.
- [47]
Z. 첸, J. 장, N. 푸, L. 첸혈액 세포 관련 질환의 페로프토시스(ferroptosis) 표적화J. Drug Target, 30(3)(2022), pp. 244-258, 10.1080/1061186X.2021.1971237
- [48]
C. Jia, H. Chen, J. Zhang, K. Zhou, Y. Zhuge, C. Niu, J. Qiu, X. Rong, Z. Shi, J. Xiao, Y. Shi, M. Chu심혈관 질환에서 파이롭토시스의 역할Int Immunopharmacol., 67(2019), pp. 311-318, 10.1016/j.intimp.2018.12.028
- [49]
L. 허우, Z. 양, Z. 왕, 외.NLRP3/ASC 매개 폐포 대식세포 파이롭토시스는 심폐 우회술로 유발된 급성 폐 손상에서 HMGB1 분비를 향상시킵니다.랩. 조사하다. ; J. Tech. Methods Pathol., 98 (8) (2018), pp. 1052-1064, 10.1038/s41374-018-0073-0
- [50](ㅏ)
Z. Hu, J. 차이NLR 염증복합체 조립 및 신호 전달의 구조적 메커니즘현재 맨 위. Microbiol Immunol., 397(2016), pp. 23-4210
(비)
A. 루, H. 우염증복합체의 구조적 메커니즘FEBS J., 282(3)(2015), 435-444페이지 - [51](ㅏ)
VA 라티남, KA 피츠제럴드염증복합체: 새로운 메커니즘과 효과기 기능세포, 165(4)(2016), pp. 792-8007
(비)
Q. 선, MJ 스캇다기능 염증 매개체로서의 카스파제-1: 비사이토카인 성숙 역할J. Leukoc. Biol., 100(5)(2016), pp. 961-967 - [52]
Z. 리, J. 구오, L. 비자가면역 질환에서 NLRP3 인플라마솜의 역할바이오메드. Pharm., 130 (2020), 조항 110542, 10.1016/j.biopha.2020.110542
- [53]
SM 맨, TD 카네간티염증복합체 활성화 조절면역. Rev., 265(1)(2015), pp. 6-21, 10.1111/imr.12296
- [54]
G. 로페즈-카스테혼유비퀴틴 시스템에 의한 인플라마솜 제어FEBS J., 287 (1) (2020), 11-26 페이지, 10.1111/febs.15118
- [55]
A. Mathur, JA 헤이워드, SM 맨염증복합체 신호 전달의 분자 메커니즘J. Leukoc. Biol., 103(2)(2018), pp. 233-257, 10.1189/jlb.3MR0617-250R
- [56]
R. 데이 사르카르, S. 신하, N. 비스와스인플라마솜의 조작: 폐암의 면역요법에 대한 유망한 접근법Int Rev. Immunol., 40 (3) (2021), pp. 171-182, 10.1080/08830185.2021.1876044
- [57]
Y. Qu, S. Misaghi, K. Newton, LL Gilmour, S. Louie, JE Cupp, GR Dubyak, D. Hackos, VM DixitPannexin-1은 세포사멸 중 ATP 방출에 필요하지만 염증복합체 활성화에는 필요하지 않습니다.J. Immunol., 186(11)(2011), pp. 6553-6561, 10.4049/jimunol.1100478
- [58]
N. 켈리, D. 젤테마, Y. 두안, Y. 그NLRP3 인플라마솜: 활성화 및 조절 메커니즘 개요Int J. Mol. Sci., 20(13)(2019), p. 3328, 10.3390/ijms20133328
- [59]
X. Fang, Y. Wang, Y. Zhang, Y. Li, J. Kwak-Kim, L. WuNLRP3 인플라마솜과 부인과 질환 및 산과 합병증에서의 중요한 역할Front Immunol., 11 (2021), 조항 555826, 10.3389/fimmu.2020.555826
- [60]
Y. 루오, C. 레이스, S. 첸출혈성 뇌졸중의 병태생리에 대한 NLRP3 인플라마솜: 검토현재 Neuropharmacol., 17 (7) (2019), pp. 582-589, 10.2174/1570159X17666181227170053
- [61]
Z. Liu, C. Wang, J. Yang, Y. Chen, B. Zhou, DW Abbott, TS XiaoCaspase-1은 Caspase 모집 및 기질 절단을 중재하는 두 가지 고유한 인터페이스를 통해 전체 길이의 Gasdermin D를 사용합니다.e5면역, 53 (1) (2020), pp. 106-114, 10.1016/j.immuni.2020.06.007
- [62]
CW Davies, I. Stowe, QT Phung, H. Ho, CE Bakalarski, A. Gupta, Y. Zhang, JR Lill, J. Payandeh, N. Kayagaki, JT Koerber카스파제 절단 모티프 항체의 발견으로 비정규적인 염증복합체 기능에 대한 통찰력 밝혀진행 Natl. Acad. 과학. 미국, 118 (12) (2021), 조항 e2018024118, 10.1073/pnas.2018024118
- [63]
S. Matikainen, TA Nyman, W. Cypryk비정규 카스파제-4/5/11 인플라마솜의 기능 및 조절J. Immunol., 204(12)(2020), pp. 3063-3069, 10.4049/jimunol.2000373PMID: 32513874
- [64]
CW Davies, I. Stowe, QT Phung, H. Ho, CE Bakalarski, A. Gupta, Y. Zhang, JR Lill, J. Payandeh, N. Kayagaki, JT Koerber카스파제 절단 모티프 항체의 발견으로 비정규적인 염증복합체 기능에 대한 통찰력 밝혀진행 Natl. Acad. 과학. 미국, 118 (12) (2021), 조항 e2018024118, 10.1073/pnas.2018024118
- [65]
SS Wright, SO Vasudevan, VA Rathinam비정규적 염증복합체 매개 파이롭토시스의 메커니즘 및 결과J.Mol. Biol., 434 (4) (2022), 조항 167245, 10.1016/j.jmb.2021.167245
- [66]
D. Yang, Y. He, R. Muñoz-Planillo, Q. Liu, G. NúñezCaspase-11은 Pyroptosis 및 내독성 쇼크를 중재하기 위해 Pannexin-1 채널과 Purinergic P2X7 Pore가 필요합니다.면역, 43 (5) (2015), pp. 923-932, 10.1016/j.immuni.2015.10.009
- [67]
F. Humphries, L. Shmuel-Galia, N. Ketelut-Carneiro, S. Li, B. Wang, VV Nemmara, R. Wilson, Z. Jiang, F. Khalighinejad, K. Muneeruddin, SA Shaffer, R. Dutta, C. Ionete, S. Pesiridis, S. Yang, PR Thompson, KA Fitzgerald석신화는 가스더민 D를 비활성화하고 파이롭토시스를 차단합니다.과학, 369 (6511) (2020), pp. 1633-1637, 10.1126/science.abb9818
- [68]
BE Burdette, AN Esparza, H. Zhu, S. Wang발열증의 가스더민 D액타팜. 죄. B., 11(9)(2021), pp. 2768-2782, 10.1016/j.apsb.2021.02.006
- [69]
N. Kayagaki, IB Stowe, BL Lee, K. O'Rourke, K. Anderson, S. Warming, T. Cuellar, B. Haley, M. Roose-Girma, QT Phung, PS Liu, JR Lill, H. Li , J. Wu, S. Kummerfeld, J. Zhang, WP Lee, SJ Snipas, GS Salvesen, LX Morris, L. Fitzgerald, Y. Zhang, EM Bertram, CC Goodnow, VM DixitCaspase-11은 비표준 염증복합체 신호 전달을 위해 가스더민 D를 절단합니다자연, 526 (7575) (2015), pp. 666-671, 10.1038/자연15541
- [70]
X. Liu, Z. Zhang, J. Ruan, Y. Pan, VG Magupalli, H. Wu, J. LiebermanInflammasome 활성화 gasdermin D는 막 구멍을 형성하여 pyroptosis를 유발합니다.자연, 535 (7610) (2016), pp. 153-158, 10.1038/자연18629
- [71]
J. 시, W. 가오, F. 샤오파이롭토시스: 가스더민 매개 프로그램된 괴사성 세포 사멸Trends Biochem Sci., 42 (4) (2017), pp. 245-254, 10.1016/j.tibs.2016.10.004
- [72]
L. 스보리지, S. 룰, E. 멀비힐, 외.GSDMD 막 기공 형태 -Tion은 pyroptotic 세포 사멸의 메커니즘을 구성합니다EMBO J., 35(16)(2016), pp. 1766-1778
- [73]
RA Aglietti, EC 듀버pyroptosis 및 gasderminfamily 기능의 기본 분자 메커니즘에 대한 최근 통찰력Trends Immunol., 38(2017), pp. 261-271
- [74]
W. 왕, T. 장CD T 세포 사멸을 촉진하는 Caspase-1 매개 파이롭토시스: 비국소적 공간 수학적 모델 J황소. 수학. Biol., 80(3)(2018), pp. 540-582, 10.1007/s11538-017-0389-8
- [75]
D. He, J. Zheng, J. Hu, J. Chen, X. 웨이긴 비코딩 RNA 및 파이롭토시스클린. 침. Acta, 504(2020), 201-208페이지, 10.1016/j.cca.2019.11.035
- [76]
W. 장, W. Xu, Y. Feng, X. Zhou당뇨병 성 심근 병증의 발병 기전에서 비 코딩 RNA 관련J. 세포 몰. Med, 23(9)(2019), pp. 5859-5867, 10.1111/jcmm.14510
이 글은 무료로 보실 수 있습니다.
- [77]
M. Cesana, D. Cacchiarelli, I. Legnini, T. Santini, O. Sthandier, M. Chinappi, A. Tramontano, I. Bozzoni긴 비암호화 RNA는 경쟁하는 내인성 RNA로 기능하여 근육 분화를 제어합니다.셀, 147(2)(2011), pp. 358-369, 10.1016/j.cell.2011.09.028
- [78]
P. Wan, W. Su, Y. Zhang, Z. Li, C. Deng, J. Li, N. Jiang, S. Huang, E. Long, Y. ZhuoLncRNA H19는 망막 허혈 / 재관류 손상에서 소교 세포 파이롭토시스 및 신경 세포 사멸을 시작합니다Cell Death Different., 27 (1) (2020), pp. 176-191, 10.1038/s41418-019-0351-4
이 글은 무료로 보실 수 있습니다.
- [79]
W. Chi, F. Li, H. Chen, Y. Wang, Y. Zhu, X. Yang, J. Zhu, F. Wu, H. Ouyang, J. Ge, RN Weinreb, K. Zhang, Y. ZhuoCaspase-8은 급성 녹내장에서 NLRP1/NLRP3 염증복합체 활성화 및 IL-1β 생산을 촉진합니다진행 Natl. Acad. 과학. 미국, 111 (30) (2014), pp. 11181-11186, 10.1073/pnas.1402819111
- [80]
A. Keniry, D. Oxley, P. Monnier, M. Kyba, L. Dandolo, G. Smits, W. ReikH19 lincRNA는 성장과 Igf1r을 억제하는 miR-675의 발달 저장소입니다.Nat. Cell Biol., 14(7)(2012), pp. 659-665, 10.1038/ncb2521
- [81]
DY Li, A. Busch, H. Jin, E. Chernogubova, J. Pelisek, J. Karlsson, B. Sennblad, S. Liu, S. Lao, P. Hofmann, A. Bäcklund, SM Eken, J. Roy, P. Eriksson, B. Dacken, D. Ramanujam, A. Dueck, S. Engelhardt, RA Boon, HH Eckstein, JM Spin, PS Tsao, L. MaegdefesselH19는 복부 대동맥류 발생 및 진행을 유도합니다순환, 138 (15) (2018), pp. 1551-1568, 10.1161/CIRCULATIONAHA.117.032184
- [82]
WH Zhang, X. Wang, M. Narayanan, Y. Zhang, C. Huo, JC Reed, RM Friedlander저산소증 및 허혈 유발 신경 세포 사멸에서 Rip2/caspase-1 경로의 기본 역할진행 Natl. Acad. 과학. 미국, 100(26)(2003), pp. 16012-16017, 10.1073/pnas.2534856100
- [83]
QZ Tuo, ST Zhang, P. 레이허혈성 뇌졸중의 신경세포 사멸 기전과 치료적 의미Med Res Rev., 42 (1) (2022), pp. 259-305, 10.1002/med.21817
- [84]
J. Liang, Q. Wang, JQ Li, T. Guo, D. Yu긴 비코딩 RNA MEG3는 miR-485/AIM2 축을 표적으로 삼아 발열증을 증가시켜 뇌 허혈-재관류 손상을 촉진합니다.특급. Neurol., 325 (2020), 조항 113139, 10.1016/j.expneurol.2019.113139
- [85]
LQ Wang, YY Zheng, HJ Zhou, XX Zhang, P. Wu, SM ZhuLncRNA-Fendrr는 HERC2를 통해 NLRC4 단백질의 유비퀴틴화 및 분해를 방지하여 소교세포의 파이롭토시스를 조절합니다.몰. Med, 27 (1) (2021), p. 39, 10.1186/s10020-021-00299-y
- [86]
HS Zhang, B. Ouyang, XY Ji, MF LiuGastrodin은 lncRNA NEAT1/miR-22-3p 축을 조절하여 Pyroptosis를 억제하여 뇌 허혈/재관류 손상을 완화합니다.Neurochem Res, 46 (7) (2021), pp. 1747-1758, 10.1007/s11064-021-03285-2
- [87]
Y. Ye, Z. Feng, S. Tian, Y. Yang, Y. Jia, G. Wang, J. Wang, W. Bai, J. Li, X. HeHBO는 lncRNA-H19/miR-423-5p/NLRP3 축을 통해 신경 줄기 세포 열분해증을 완화하고 산소 포도당 결핍 후 신경 생성을 개선합니다산화물. Med Cell Longev., 2022(2022), 조항 9030771, 10.1155/2022/9030771
- [88]
Z. Xue, Q. Xi, H. Liu, X. Guo, J. Zhang, Z. Zhang, Y. Li, G. Yang, D. Zhou, H. Yang, L. Zhang, Q. Zhang, C. Gu, J. Yang, Y. Da, Z. Yao, S. Duo, R. ZhangmiR-21은 NLRP3 inflammasome 활성화를 촉진하여 발열증 및 내독소 쇼크를 중재합니다세포 사멸 Dis., 10 (6) (2019), p. 461, 10.1038/s41419-019-1713-z
이 글은 무료로 보실 수 있습니다.
- [89]
L. Vande Walle, N. Van Opdenbosch, P. Jacques, A. Fossoul, E. Verheugen, P. Vogel, R. Beyaert, D. Elewaut, TD Kanneganti, G. van Loo, M. LamkanfiA20에 의한 NLRP3 인플라마솜의 음성 조절은 관절염을 예방합니다자연, 512 (7512) (2014), pp. 69-73, 10.1038/자연13322
- [90]
J. Shi, Y. Zhao, K. Wang, X. Shi, Y. Wang, H. Huang, Y. Zhuang, T. Cai, F. Wang, F. Shao염증성 카스파제에 의한 GSDMD의 절단은 파이롭토시스 세포 사멸을 결정합니다자연, 526 (7575) (2015), pp. 660-665, 10.1038/자연15514
- [91]
F. Yang, Y. Qin, Y. Wang, A. Li, J. Lv, X. Sun, H. Che, T. Han, S. Meng, Y. Bai, L. WangLncRNA KCNQ1OT1은 당뇨병 성 심근 병증에서 열화증을 매개합니다세포물리학. Biochem, 50 (4) (2018), pp. 1230-1244, 10.1159/000494576
이 글은 무료로 보실 수 있습니다.
- [92]
L. Galluzzi, I. Vitale, SA Aaronson, JM Abrams, D. Adam, P. Agostinis, ES Alnemri, L. Altucci, I. Amelio, DW Andrews, M. Annicchiarico-Petruzzelli, AV Antonov, E. Arama, EH Baehrecke, NA Barlev, NG Bazan, F. Bernassola, MJM Bertrand, K. Bianchi, MV Blagosklonny, K. Blomgren, C. Borner, P. Boya, C. Brenner, M. Campanella, E. Candi, D. Carmona- Gutierrez, F. Cecconi, FK Chan, NS Chandel, EH Cheng, JE Chipuk, JA Cidlowski, A. Ciechanover, GM Cohen, M. Conrad, JR Cubillos-Ruiz, PE Czabotar, V. D'Angiolella, TM Dawson, VL Dawson, V. De Laurenzi, R. De Maria, KM Debatin, RJ DeBerardinis, M. Deshmukh, N. Di Daniele, F. Di Virgilio, VM Dixit, SJ Dixon, CS Duckett, BD Dynlacht, WS El-Deiry, JW Elrod, GM Fimia, S. Fulda, AJ García-Sáez, AD Garg, C. Garrido, E. Gavathiotis, P. Golstein, E. Gottlieb, DR Green, LA Greene, H. Gronemeyer, A. Gross, G. Hajnoczky , JM Hardwick, IS Harris, MO Hengartner, C. Hetz, H. Ichijo, M. Jäättelä, B. Joseph, PJ Jost, PP Juin, WJ Kaiser, M. Karin, T. Kaufmann, O. Kepp, A. Kimchi , RN Kitsis, DJ Klionsky, RA Knight, S. Kumar, SW Lee, JJ Lemasters, B. Levine, A. Linkermann, SA Lipton, RA Lockshin, C. López-Otín, SW Lowe, T. Luedde, E. Lugli , M. MacFarlane, F. Madeo, M. Malewicz, W. Malorni, G. Manic, JC Marine, SJ Martin, JC Martinou, JP Medema, P. Mehlen, P. Meier, S. Melino, EA Miao, JD Molkentin , UM Moll, C. Muñoz-Pinedo, S. Nagata, G. Nuñez, A. Oberst, M. Oren, M. Overholtzer, M. Pagano, T. Panaretakis, M. Pasparakis, JM Penninger, DM Pereira, S. Pervaiz, ME Peter, M. Piacentini, P. Pinton, JHM Prehn, H. Puthalakath, GA Rabinovich, M. Rehm, R. Rizzuto, CMP Rodrigues, DC Rubinsztein, T. Rudel, KM Ryan, E. Sayan, L. Scorrano, F. Shao, Y. Shi, J. Silke, HU Simon, A. Sistigu, BR Stockwell, A. Strasser, G. Szabadkai, SWG Tait, D. Tang, N. Tavernarakis, A. Thorburn, Y. Tsujimoto , B. Turk, T. Vanden Berghe, P. Vandenabeele, MG Vander Heiden, A. Villunger, HW Virgin, KH Vousden, D. Vucic, EF Wagner, H. Walczak, D. Wallach, Y. Wang, JA Wells, W. 우드, J. 위안, Z. Zakeri, B. Zhivotovsky, L. Zitvogel, G. Melino, G. Kroemer세포 사멸의 분자 메커니즘: 2018년 세포 사멸 명명법 위원회의 권장 사항Cell Death Different., 25 (3) (2018), pp. 486-541, 10.1038/s41418-017-0012-4
이 글은 무료로 보실 수 있습니다.
- [93]
자가포식의 약리학적 조절: 치료 잠재력과 지속적인 장애.Nat Rev Drug Discov. 2017;16(7):487–511.
- [94]
N. 미즈시마, M. 고마츠자가포식: 세포와 조직의 재생세포, 147(4)(2011), pp. 728-741
- [95]
V. Sagulenko, SJ Thygesen, DP Sester, 외.AIM2 및 NLRP3 인플라마솜은 ASC를 통해 세포사멸 및 파이롭토시스 사망 경로를 모두 활성화합니다.Cell death Different., 20 (9) (2013), pp. 1149-1160, 10.1038/cdd.2013.37
이 글은 무료로 보실 수 있습니다.
- [96]
J. 후쿠모토, I. 후쿠모토, PT Parthasarathy, 외.NLRP3 결실은 과산소증으로 인한 급성 폐 손상으로부터 보호합니다오전. JPhysiol, 305 (1 Pt.1) (2013), pp. C182-C189, 10.1152/ajpcell.00086.2013
이 글은 무료로 보실 수 있습니다.
- [97]
PC Liao, LK Chao, JC Chou, 외.NLRP3 단백질 발현 및 easpase-1 매개 인터루킨-1 β 분비 조절에서 지질다당류/아데노신 삼인산 매개 신호 전달염증. 결의안, 62(1)(2013), 89-96페이지, 10.1007/s00011-012.0555.2
- [98]
Z. Liu, G. Lu, Y. Xu, 외.멜라토닌은 생쥐 지방조직에서 NF-K B/GSDMD 신호를 억제함으로써 인피트마솜 유발 파이롭토시스를 완화합니다.JPinealRes, 63 (1) (2017), p. 7, 10.1111/jpi.12414
- [99]
R. Jin, L. Liu, S. Zhang, A. Nanda, G. Li급성 허혈성 뇌졸중에서 염증과 그 매개체의 역할J. Cardiovasc 번역. 결의안, 6(5)(2013), 834-851페이지, 10.1007/s12265-013-9508-6
- [100]
CD Maida, RL Norrito, M. Daidone, A. Tuttolomondo, A. Pinto허혈성 뇌졸중의 신경염증 기전: 심장색전성 뇌졸중, 배경 및 치료 접근법에 초점Int J. Mol. Sci., 21(18)(2020), p. 6454, 10.3390/ijms21186454
- [101]
A. 나카무라, K. 오타니, T. 시치타허혈성 뇌졸중의 지질 매개체와 무균 염증Int Immunol., 32 (11) (2020), pp. 719-725, 10.1093/intimm/dxaa027
- [102]
S. Xu, J. Lu, A. Shao, JH Zhang, J. Zhang신경교 세포: 허혈성 뇌졸중에서 면역 반응의 역할Front Immunol., 11 (2020), p. 294, 10.3389/fimmu.2020.00294
- [103]
Y. Zhai, X. Meng, T. Ye, 외.MCC950으로 NLRP3 인플라마솜 활성화를 억제하면 db/db 마우스에서 당뇨병성 뇌병증이 개선됩니다분자, 23(3)(2018)파이:E522
- [104]
L. 완, X. 위안, M. 리우, 외.miRNA-223-3p는 NLRP3를 조절하여 세포사멸을 촉진하고 hep3B 세포의 증식을 억제합니다.특급. 거기. 메드, 15(3)(2018)2 429-2 435
- [105]
J. Liao, VS Kapadia, LS Brown, N. Cheong, C. Longoria, D. Mija, M. Ramgopal, J. Mirpuri, DC McCurnin, RC SavaniNLRP3 인플라마솜은 기관지폐 이형성증의 발병에 결정적으로 관여합니다Nat. Commun., 6(2015), p. 8977, 10.1038/ncomms9977
이 글은 무료로 보실 수 있습니다.
- [106]
X. Wang, R. Huo, Z. Liang, C. Xu, T. Chen, J. Lin, L. Li, W. Lin, B. Pan, X. Fu, S. Chen심바스타틴은 NLRP3 염증복합체 활성화를 억제하고 KLF2 매개 메커니즘을 통해 과산소증 유발 기관지폐 이형성증의 폐 손상을 개선합니다산화물. Med Cell Longev., 2022(2022), 조항 8336070, 10.1155/2022/8336070
- [107]
T. 하세가와, M. 나카시마, Y. 스즈키핵 DNA 손상으로 인한 NLRP3 염증복합체 활성화는 인간 각질형성세포에서 UVB 유발 염증 반응을 촉진합니다생화학 생물물리학. Res Commun., 477 (3) (2016), pp. 329-335, 10.1016/j.bbrc.2016.06.106
- [108]
L. Hou, Z. Yang, Z. Wang, X. Zhang, Y. Zhao, H. Yang, B. Zheng, W. Tian, S. Wang, Z. He, X. WangNLRP3/ASC 매개 폐포 대식세포 파이롭토시스는 심폐 우회술로 유발된 급성 폐 손상에서 HMGB1 분비를 향상시킵니다.Lab Invest, 98(8)(2018), pp. 1052-1064, 10.1038/s41374-018-0073-0
- [109]
A. 린더, V. 호눙T 세포의 염증복합체J.Mol. Biol., 434 (4) (2022), 조항 167275, 10.1016/j.jmb.2021.167275
- [110]
FM Hughes Jr, HM Hill, CM Wood, AT Edmondson, A. Dumas, WC Foo, JM Oelsen, G. Rac, JT PurvesNLRP3 Inflammasome은 방광출구 폐쇄로 인해 생성된 염증을 중재합니다.J. Urol., 195 (5) (2016), pp. 1598-1605, 10.1016/j.juro.2015.12.068
- [111]
Q. Yu, T. Zhao, M. Liu, D. Cao, J. Li, Y. Li, M. Xia, X. Wang, T. Zheng, C. Liu, X. Mu, P. Sun신경계 질환의 병진 치료에서 NLRP3 인플라마솜 표적화: 업데이트Front Pharm., 12(2021), 조항 707696, 10.3389/fphar.2021.707696
- [112]
L. 피어스, SM 데이비슨, DM 옐론원격 허혈성 조절이 염증을 감소시키나요? 선천면역과 사이토카인 반응에 중점Basic Res Cardiol., 116 (1) (2021), p. 12, 10.1007/s00395-021-00852-0
- [113]
MJ Zhang, QC Zhao, MX Xia, J. Chen, YT Chen, X. Cao, Y. Liu, ZQ Yuan, XY Wang, Y. XuHDAC3 억제제 RGFP966은 AIM2 염증복합체를 하향 조절하여 허혈성 뇌 손상을 개선했습니다.FASEB J., 34 (1) (2020), 페이지 648-662, 10.1096/fj.201900394RRR
- [114]
H. 다케다, T. 야마구치, H. 야노, J. 다나카뇌경색에서의 소교세포 대사 장애 및 신경염증J.Pharm. Sci., 145 (1) (2021), 130-139페이지, 10.1016/j.jphs.2020.11.007
- [115]
Z. Gong, J. Pan, Q. Shen, M. Li, Y. Peng미토콘드리아 기능 장애는 뇌 허혈 / 재관류 손상 동안 NLRP3 염증복합체 활성화를 유도합니다J. 신경염증., 15 (1) (2018), p. 242, 10.1186/s12974-018-1282-6
이 글은 무료로 보실 수 있습니다.
- [116]
V. 텐, A. 갈킨뇌 허혈/재관류 손상에서 미토콘드리아 복합체 I 손상의 메커니즘. 가설몰. Cell Neurosci., 100 (2019), 조항 103408, 10.1016/j.mcn.2019.103408
- [117]
S. Liu, J. Du, D. Li, P. Yang, Y. Kou, C. Li, Q. Zhou, Y. Lu, T. Hasegawa, M. Li산화 스트레스에 의한 파이롭토시스는 MG63 세포의 골형성 기능 장애를 유발합니다J.Mol. Histol., 51 (3) (2020), pp. 221-232, 10.1007/s10735-020-09874-9
- [118]
B. Bai, Y. Yang, Q. Wang, M. Li, C. Tian, Y. Liu, LHH Aung, PF Li, T. Yu, XM Chu내피 기능 장애의 NLRP3 염증복합체세포 사멸 Dis., 11 (9) (2020), p. 776, 10.1038/s41419-020-02985-x
이 글은 무료로 보실 수 있습니다.
- [119]
Y. Zhao, F. Yan, J. Yin, R. Pan, W. Shi, Z. Qi, Y. Fang, Y. Huang, S. Li, Y. Luo, X. Ji, KJ Liu아연과 반응성 산소 종 사이의 시너지 상호 작용은 쥐의 허혈성 뇌 손상을 증폭시킵니다뇌졸중, 49 (9) (2018), pp. 2200-2210, 10.1161/STROKEAHA.118.021179
- [120]
Z. Qiu, Y. He, H. Ming, S. Lei, Y. Leng, ZY Xia, LPS 지질다당류H9C2 심근세포에서 ROS 의존성 NLRP3 염증복합체 매개 열화증을 활성화하여 고혈당 및 저산소증/재산소화로 인한 손상을 악화시킵니다.J. 당뇨병 치료(Diabetes Res), 2019(2019), 조항 8151836, 10.1155/2019/8151836
- [121]
Y. Wang, P. Shi, Q. Chen, Z. Huang, D. Zou, J. Zhang, X. Gao, Z. Lin, ROS 미토콘드리아GSDMD 산화를 유도하여 대식세포 파이롭토시스를 촉진합니다.J.Mol. Cell Biol., 11 (12) (2019), pp. 1069-1082, 10.1093/jmcb/mjz020
이 글은 무료로 보실 수 있습니다.
- [122]
MS Sun, H. Jin, X. Sun, S. Huang, FL Zhang, ZN Guo, Y. Yang허혈-재관류 손상의 유리기 손상: 혈관재개통 치료 후 급성 허혈성 뇌졸중의 장애물산화물. Med Cell Longev., 2018(2018), 조항 3804979, 10.1155/2018/3804979
- [123]
HW Shin, C. Shinotsuka, S. Torii, K. Murakami, K. Nakayama효모 Vps1p 및 Dnm1p와 상동성인 새로운 포유류 다이나민 관련 단백질의 식별 및 세포내 위치 파악J. Biochem, 122(3)(1997), pp. 525-530, 10.1093/oxfordjournals.jbchem.a021784
- [124]
L. Zhang, F. Jiang, Y. Chen, J. Luo, S. Liu, B. Zhang, Z. Ye, W. Wang, X. Liang, W. ShiNecrostatin-1은 Drp1 발현 감소를 통해 쥐 관형 세포주 NRK-52E에서 허혈 손상으로 인한 세포 사멸을 약화시킵니다.Int J. Mol. Sci., 14(12)(2013), pp. 24742-24754, 10.3390/ijms141224742
- [125]
유 첸인간 신세뇨관 상피 세포의 저산소증 및 재산소화에 의한 열분해 기전에서 다이나민-1의 역할 [D]제3군 의과대학(2016)
- [126]
Z. Gong, J. Pan, Q. Shen, M. Li, Y. Peng미토콘드리아 기능 장애는 뇌 허혈 / 재관류 손상 동안 NLRP3 염증복합체 활성화를 유도합니다J. 신경염증., 15 (1) (2018), p. 242, 10.1186/s12974-018-1282-6
이 글은 무료로 보실 수 있습니다.
- [127]
T. Zhang, MT He, XP Zhang, L. Jing, JZ Zhang단백질 2 결핍을 분리하면 고혈당으로 인한 뇌 허혈 악화 및 시험관 내 및 생체 내 재관류 손상 후 NLRP3 염증복합체 활성화가 강화됩니다Neurochem Res, 46(6)(2021), pp. 1359-1371, 10.1007/s11064-021-03270-9
이 글은 무료로 보실 수 있습니다.
- [128]
H. Liu, X. Wu, J. Luo, L. Zhao, X. Li, H. Guo, H. Bai, W. Cui, W. Guo, D. Feng, Y. QuAdiponectin 펩타이드는 AMPK/GSK-3β를 조절하여 뇌 허혈-재관류 손상 후 산화 스트레스와 NLRP3 염증복합체 활성화를 완화합니다.특급. Neurol., 329 (2020), 조항 113302, 10.1016/j.expneurol.2020.113302
- [129]
W. Zhu, KA Romano, L. Li, JA Buffa, N. Sangwan, P. Prakash, AN Tittle, XS Li, X. Fu, C. Androjna, AJ DiDonato, K. Brinson, BD Trapp, MA Fischbach, FE 레이, AM 하자르, JA 디도나토, SL 하젠장내 미생물은 트리메틸아민 N-산화물 경로를 통해 뇌졸중 심각도에 영향을 미칩니다세포 숙주 미생물, 29 (7) (2021), pp. 1199-1208, 10.1016/j.chom.2021.05.002Epub 2021년 6월 16일. PMID: 34139173; PMCID: PMC8288076
이 글은 무료로 보실 수 있습니다.
- [130]
PM Bath, K. Krishnan, JP Appleton산화질소 기증자(질산염), 엘- 급성 뇌졸중을 위한 아르기닌 또는 산화질소 합성효소 억제제코크란 데이터베이스 시스템 개정판, 4(4)(2017), 조항 CD000398, 10.1002/14651858.CD000398.pub2PMID: 28429459; PMCID:PMC6478181.
- [131]
C. Li, Z. Zhao, Y. Luo, T. Ning, P. Liu, Q. Chen, Y. Chu, Q. Guo, Y. Zhang, W. Zhou, H. Chen, Z. Zhou, Y. Wang, B. Su, H. You, T. Zhang, X. Li, H. Song, C. Li, T. Sun, C. Jiang급성 허혈성 뇌졸중에서 산화 스트레스를 줄이고 염증성 미세 환경을 조절하여 신경 보호를 위한 대식세포로 위장한 이산화망간 나노입자고급 과학. (Weinh. ), 8 (20) (2021), 조항 e2101526, 10.1002/advs.202101526Epub 2021 8월 26일. PMID: 34436822; PMCID: PMC8529435
- [132]
M. Bladowski, J. Gawrys, D. Gajecki, E. Szahidewicz-Krupska, A. Sawicz-Bladowska, A. Doroszko허혈성 뇌졸중에서 혈소판과 산화질소 생체변환의 역할: 벤치에서 침대 옆까지의 번역적 검토산화물. Med Cell Longev., 2020(2020), 조항 2979260, 10.1155/2020/2979260PMID: 32908630; PMCID: PMC7474795.
- [133]
H. Liu, J. Li, F. Zhao, H. Wang, Y. Qu, D. Mu저산소성 또는 허혈성 뇌 손상에서의 산화질소 합성효소Rev. Neurosci., 26 (1) (2015), pp. 105-117, 10.1515/revneuro-2014-0041PMID: 25720056
- [134]
JM Wierońska, P. Cieślik, L. Kalinowski뇌 허혈성 저산소증 후 결과 및 회복에 중요한 요인인 산화질소 의존 경로생체분자, 11(8)(2021), p. 1097, 10.3390/biom11081097PMID: 34439764; PMCID:PMC8392725.
- [135]
M. 엔드레스, G. 스콧, S. 나무라, 외.뇌 허혈-재관류의 쥐 모델에서 폴리(ADP-리보스) 합성효소의 활성화에서 퍼옥시니트리트 및 뉴런 산화질소 합성효소의 역할신경 과학. Lett., 248(1)(1998), 41-44페이지
- [136]
MJ 엘리아슨, K. 삼페이, AS 만디르, 외.폴리(ADP-리보스) 폴리머라제 유전자 파괴로 생쥐가 뇌 허혈에 내성을 갖게 됨Nat. Med, 3 (10) (1997), pp. 1089-1095
- [137]
M. 엔드레스, ZQ 왕, S. 나무라, 외.허혈성 뇌 손상은 폴리(ADP-리보스) 중합효소의 활성화에 의해 매개됩니다.J. Cereb. 혈류. Metab., 17(11)(1997), pp. 1143-1151
이 글은 무료로 보실 수 있습니다.
- [138]
R. 장, S. 탕, W. 황, 외.쥐의 PARP-1에 의해 유발된 신경혈관 단위 손상의 약화를 통해 뇌허혈 후 뇌를 보호합니다.Brain Res, 1624(2015), 페이지 9-18
- [139]
L. 미누톨리, D. 푸졸로, M. 리날디, 외.뇌, 심장, 신장 및 고환 허혈/재관류 손상에서 ROS 매개 NLRP3 염증복합체 활성화산화물. Med Cell Longev., 2016(2016), 조항 2183026
- [140]
P. 홍, 구 RN, FX 리, 외.당뇨병과 동반된 허혈성 뇌졸중의 잠재적 치료법인 NLRP3 인플라마솜J. 신경염증., 16(1)(2019), p. 121
이 글은 무료로 보실 수 있습니다.
- [141]
F. 양, Z. 왕, X. 웨이, 외.NLRP3 결핍은 실험적 허혈성 뇌졸중에서 신경 혈관 손상을 개선합니다J. Cereb. 혈류. Metab., 34(4)(2014), pp. 660-667
이 글은 무료로 보실 수 있습니다.
- [142]
X. Xu, L. Zhang, X. Ye, 외.Nrf2/ARE 경로는 뇌 허혈 재관류 후 BV2 세포에서 ROS에 의해 유발된 NLRP3 염증복합체 활성화를 억제합니다염증. 결의안, 67(1)(2018), 57-65페이지
- [143]
I. 벨레자, S. 그로텔리, E. 코스탄지, 외.Peroxynitrite는 근위축성 측삭 경화증의 SOD1(G93A) 마우스 모델에서 NLRP3 인플라마솜 캐스케이드를 활성화합니다몰. Neurobiol., 55 (3) (2018), pp. 2350-2361
- [144]
R. 길, A. Tsung, T. Billiar산화 스트레스와 염증의 연결: 유료 유사 수용체프리 라딕. Biol. Med, 48 (9) (2010), pp. 1121-1132
- [145]
E. 파라다, AI 카사스, A. 팔로미노-안톨린, 외.초기 유료 유사 수용체 4 차단은 설치류 및 인간 뇌 허혈 모델에서 소교세포 염증 유발 표현형에 의해 유발된 ROS 및 염증을 감소시킵니다브르. J. Pharm., 176(15)(2019), pp. 2764-2779
- [146]
X. Xu, Z. Wen, N. Zhao, 외.Tolllike 수용체 4의 새로운 조절자인 MicroRNA-1906은 생쥐의 뇌졸중 실험 후 허혈성 손상을 개선합니다.J. Neurosci., 37 (43) (2017), pp. 10498-10515
- [147]
A. Moraga, V. Gómez-Vallejo, MI Cuartero, 외.양전자 방출 단층 촬영을 통한 뇌 허혈 후 세포 증식 및 염증에 대한 톨 유사 수용체 4의 역할 영상화J. Cereb. 혈류. Metab., 36(4)(2016), pp. 702-708
- [148]
Y. Qiu, Q. Yin, Y. Fei, 외.JLX001은 TLR2/4-NF-κB 신호 전달 경로를 억제하여 pMCAO 쥐의 염증 반응과 산화 스트레스를 조절했습니다.Neurochem Res, 44 (8) (2019), pp. 1924-1938
- [149]
S. Orellana-Urzúa, I. Rojas, L. Líbano, R. Rodrigo허혈성 뇌졸중의 병태생리: 산화 스트레스의 역할현재 제약 Des., 26(34)(2020), 4246-4260페이지, 10.2174/1381612826666200708133912
- [150]
CD Maida, RL Norrito, M. Daidone, A. Tuttolomondo, A. Pinto허혈성 뇌졸중의 신경염증 기전: 심장색전성 뇌졸중, 배경 및 치료 접근법에 초점Int J. Mol. Sci., 21(18)(2020), p. 6454, 10.3390/ijms21186454
- [151]
Z. He, N. Ning, Q. Zhou, SE Khoshnam, M. Farzaneh허혈성 뇌졸중의 치료 표적으로 미토콘드리아프리 라딕. Biol. Med, 146(2020), 45-58페이지, 10.1016/j.freeradbiomed.2019.11.005
- [152]
Y. Okada, T. Numata, K. Sato-Numata, RZ Sabirov, H. Liu, SI Mori, S. Morishima세포사멸, 시스플라틴 저항성, 괴사, 허혈성 세포 사멸, 뇌졸중 및 심근경색에서 부피 조절 음이온 채널인 VSOR 및 Maxi-Cl의 역할현재 맨 위. 회원, 83 (2019), pp. 205-283, 10.1016/bs.ctm.2019.03.001
- [153]
Y. 자오, X. 장, X. 첸, Y. 웨이뇌경색 및 허혈성 뇌졸중의 신경 손상: 메커니즘부터 치료까지(리뷰)Int J. Mol. Med., 49(2)(2022), p. 15, 10.3892/ijmm.2021.5070
- [154]
M. Fricker, AM Tolkovsky, V. Borutaite, M. Coleman, GC Brown신경 세포 사멸물리. Rev., 98(2)(2018), pp. 813-880, 10.1152/physrev.00011.2017
이 글은 무료로 보실 수 있습니다.
- [155]
E. Sekerdag, I. Solaroglu, Y. Gursoy-Ozdemir뇌졸중의 세포 사멸 메커니즘과 새로운 분자 및 세포 치료 옵션CurrNeuropharmacol, 16 (9) (2018), pp. 1396-1415, 10.2174/1570159X16666180302115544
- [156]
HL 왕, QH Zhou, MB Xu, XL Zhou, GQ Zheng실험적 국소 뇌 허혈에 대한 아스트라갈로사이드 IV: 전임상 증거 및 가능한 메커니즘산화물. Med Cell Longev., 2017(2017), 조항 8424326, 10.1155/2017/8424326
- [157]
H. 자오, Y. 첸, H. 펑출혈성 뇌졸중의 병태생리학에서 P2X7 수용체 관련 프로그램화된 세포 사멸CurrNeuropharmacol, 16 (9) (2018), pp. 1282-1295, 10.2174/1570159X16666180516094500
- [158]
K. 두리스, Z. Splichal, M. Jurajda뇌졸중 관련 프로그램화된 세포 사멸에서 염증 반응의 역할CurrNeuropharmacol, 16 (9) (2018), pp. 1365-1374, 10.2174/1570159X16666180222155833
- [159]
DY Fann, EP Nickles, L. Poh, V. Rajeev, S. Selvaraji, H. Schwarz, TV ArumugamCD137 리간드-CD137 상호작용은 허혈성 뇌졸중 후 염증복합체 관련 뇌 손상에 필요합니다.Neuromolecular Med, 22 (4) (2020), pp. 474-483, 10.1007/s12017-020-08623-1
- [160]
V. 토도로프, M. 디미트로바뇌졸중과 면역 체계: 새로운 전략에 대한 검토Folia Med (Plovdiv.), 62 (3) (2020), pp. 431-437, 10.3897/folmed.62.e49451
- [161]
FL Yeh, DV Hansen, M. ShengTREM2, 소교세포 및 신경퇴행성 질환트렌드 몰. Med, 23(6)(2017), pp. 512-533, 10.1016/j.molmed.2017.03.008
- [162]
V. 쿠마르신경염증의 발병기전에서 톨 유사 수용체J. Neuroimmunol., 332 (2019), pp. 16-30, 10.1016/j.jneuroim.2019.03.012
- [163]
Z. Zhu, L. Zheng, Y. Li, T. Huang, YC Chao, L. Pan, H. Zhu, Y. Zhao, W. Yu, P. Li허혈성 뇌졸중 후 신경혈관 복구를 위한 골수 세포의 잠재적인 면역치료 표적Front Neurosci., 13 (2019), p. 758, 10.3389/fnins.2019.00758
- [164]
DY Fann, YA Lim, YL Cheng, KZ Lok, P. Chunduri, SH Baik, GR Drummond, ST Dheen, CG Sobey, DG Jo, CL Chen, TV ArumugamNF-κB 및 MAPK 신호 전달이 허혈성 뇌졸중 후 뉴런에서 NLRP 염증복합체 활성화를 촉진한다는 증거몰. Neurobiol., 55 (2) (2018), pp. 1082-1096, 10.1007/s12035-017-0394-9
- [165]
J. Li, JH Hao, D. Yao, R. Li, XF Li, ZY Yu, X. Luo, XH Liu, MH Wang, W. WangCaspase-1 억제는 뇌 허혈의 쥐 모델에서 pyroptosis의 표준 염증복합체 경로를 표적으로 삼아 신경 세포 사멸을 예방합니다CNS 신경과학. Ther., 26(9)(2020), pp. 925-939, 10.1111/cns.13384
이 글은 무료로 보실 수 있습니다.
- [166]
J. Liang, Q. Wang, JQ Li, T. Guo, D. Yu긴 비코딩 RNA MEG3는 miR-485/AIM2 축을 표적으로 삼아 발열증을 증가시켜 뇌 허혈-재관류 손상을 촉진합니다.특급. Neurol., 325 (2020), 조항 113139, 10.1016/j.expneurol.2019.113139
- [167]
D. 로시성상교세포 생리병리학: 세포간 네트워킹, 염증 및 세포 사멸의 교차점2015음식물. Neurobiol., 130(2015), pp. 86-120
- [168]
NR 심즈, WP Yew뇌졸중의 반응성 성상교세포증: 신경 기능 회복에 대한 성상교세포의 기여Neurochem Int, 107 (2017), pp. 88-103, 10.1016/j.neuint.2016.12.016
- [169]
SL Macauley, M. Pekny, MS 샌즈영아 신경 세로이드 리포푸신증에서 약화된 성상교세포 활성화의 역할J. Neurosci., 31 (43) (2011), pp. 15575-15585, 10.1523/JNEUROSCI.3579-11.2011
- [170]
BR Barker, DJ Taxman, JP Ting염증복합체와 기타 염증성 사이토카인을 처리하는 IL-1β/IL-18 간의 교차 조절현재 의견. Immunol., 23(5)(2011), pp. 591-597, 10.1016/j.coi.2011.07.005
- [171]
김지와이, 박제이, 장진영, 김상현, 이재이허혈성 뇌졸중 후 염증: 백혈구와 신경아교세포의 역할특급. Neurobiol., 25 (5) (2016), pp. 241-251, 10.5607/en.2016.25.5.241
- [172]
X. Sun, X. Song, L. Zhang, J. Sun, X. Wei, L. Meng, J. AnNLRP2는 허혈성 뇌졸중의 마우스 모델에서 높게 발현됩니다.생화학 생물물리학. Res Commun., 479 (4) (2016), pp. 656-662, 10.1016/j.bbrc.2016.09.157
- [173]
P. An, J. Xie, S. Qiu, Y. Liu, J. Wang, X. Xiu, L. Li, M. Tang히피둘린은 NLRP3 매개 파이롭토시스 억제를 통해 뇌허혈 재관류 손상에 대한 신경보호 활성을 나타냅니다.생명과학, 232(2019), 조항 116599, 10.1016/j.lfs.2019.116599
- [174]
C. Meng, J. Zhang, L. Zhang, Y. Wang, Z. Li, J. Zhao쥐의 뇌허혈/재관류(I/R) 손상에 대한 NLRP6의 효과J.Mol. Neurosci., 69 (3) (2019), 411-418페이지, 10.1007/s12031-019-01370-4
- [175]
J. Zhang, N. Jiang, L. Zhang, C. Meng, J. Zhao, J. Wu성상교세포에서 발현된 NLRP6는 염증복합체를 활성화하고 파이롭토시스를 유도하여 OGD/R 후 뉴런 손상을 악화시킵니다.Int Immunopharmacol., 80(2020), 조항 106183, 10.1016/j.intimp.2019.106183
- [176]
L. Lian, Y. Zhang, L. Liu, L. Yang, Y. Cai, J. Zhang, S. Xu허혈성 뇌졸중의 신경염증: Microglia의 MicroRNA 매개 분극에 초점전면 몰. Neurosci., 13 (2021), 조항 612439, 10.3389/fnmol.2020.612439
- [177]
D. 한, H. 리우, Y. 가오허혈성 뇌졸중에서 말초 단핵구와 대식세포의 역할뉴롤. Sci., 41(12)(2020), pp. 3589-3607, 10.1007/s10072-020-04777-9
- [178]
J. Zhang, N. Jiang, L. Zhang, C. Meng, J. Zhao, J. Wu성상교세포에서 발현된 NLRP6는 염증복합체를 활성화하고 파이롭토시스를 유도하여 OGD/R 후 뉴런 손상을 악화시킵니다.Int Immunopharmacol., 80(2020), 조항 106183, 10.1016/j.intimp.2019.106183
- [179]
L. Poh, SW Kang, SH Baik, GYQ Ng, DT She, P. Balaganapathy, ST Dheen, T. Magnus, M. Gelderblom, CG Sobey, EH Koo, DY Fann, TV ArumugamNLRC4 인플라마좀이 허혈성 뇌졸중 후 세포사멸 및 파이롭토시스 소교세포 사망을 매개한다는 증거뇌 행동. Immun., 75 (2019), pp. 34-47, 10.1016/j.bbi.2018.09.001
- [180]
P. Xu, X. Zhang, Q. Liu, Y. Xie, X. Shi, J. Chen, Y. Li, H. Guo, R. Sun, Y. Hong, X. Liu, G. Xu소교세포 TREM-1 수용체는 실험적 허혈성 뇌졸중에서 SYK와의 상호작용을 통해 신경염증성 손상을 매개합니다Cell Death Dis., 10 (8) (2019), p. 555, 10.1038/s41419-019-1777-9
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- [181]
Q. Li, Y. Cao, C. Dang, B. Han, R. Han, H. Ma, J. Hao, L. Wang이중 가닥 DNA 감지 cGAS의 억제는 허혈성 뇌졸중 후 뇌 손상을 개선합니다엠보 몰. Med, 12 (4) (2020), 조항 e11002, 10.15252/emm.201911002
- [182]
Y. Zhao, J. Yang, C. Li, G. Zhou, H. Wan, Z. Ding, H. Wan, H. Zhou뇌허혈성 손상 과정에서 신경혈관 단위의 역할제약 결의안, 160(2020), 조항 105103, 10.1016/j.phrs.2020.105103
- [183]
X. Hu, TM De Silva, J. Chen, FM Faraci허혈성 뇌졸중에 있어서의 뇌혈관질환과 신경혈관 손상순환 결의안, 120(3)(2017), 449-471페이지, 10.1161/CIRCRESAHA.116.308427
- [184]
C. Yang, KE Hawkins, S. Doré, E. Candelario-Jalil허혈성 뇌졸중에서 혈액뇌장벽 손상의 신경염증 기전오전. J. Physiol. 세포 물리학, 316(2)(2019), 페이지 C135-C153, 10.1152/ajpcell.00136.2018
이 글은 무료로 보실 수 있습니다.
- [185]
S. 이스마엘, L. 자오, S. 나수히, T. 이쉬라트뇌졸중 후 신경 보호를 위한 잠재적인 접근법인 NLRP3-inflammasome의 억제과학. 국회의원, 8(1)(2018), p. 5971, 10.1038/s41598-018-24350-x
이 글은 무료로 보실 수 있습니다.
- [186]
Y. Wang, X. Guan, CL Gao, W. Ruan, S. Zhao, G. Kai, F. Li, T. Pang새로운 PGC-1α 활성화제인 메디오레시놀은 PPARα-GOT1 축을 통해 허혈성 뇌졸중에서 내피세포의 발열을 예방합니다.제약 결의안, 169(2021), 조항 105640, 10.1016/j.phrs.2021.105640
- [187]
Y. Zhang, X. Li, S. Qiao, D. Yang, Z. Li, J. Xu, W. Li, L. Su, W. LiuOccludin 분해는 뇌 미세혈관 내피 세포를 시험관 내 재관류 손상에 더 취약하게 만듭니다.J. Neurochem, 156 (3) (2021), pp. 352-366, 10.1111/jnc.15102
- [188]
Y. Liang, P. Song, W. Chen, X. Xie, R. Luo, J. Su, Y. Zhu, J. Xu, R. Liu, P. Zhu, Y. Zhang, M. HuangCaspase-1의 억제는 발열증 활성화를 억제함으로써 허혈 관련 혈액-뇌 장벽 기능 장애 및 완전성을 개선합니다Front Cell Neurosci., 14 (2021), 조항 540669, 10.3389/fncel.2020.540669
- [189]
Q. 리, Z. 다이, Y. 카오, L. 왕Caspase-1 억제는 M2 미세아교세포/대식세포를 분극화하고 NF-κB 활성화를 억제함으로써 실험적 뇌졸중에서 신경 보호를 중재합니다생화학 생물물리학. Res Commun., 513 (2) (2019), 479-485페이지, 10.1016/j.bbrc.2019.03.202
- [190]
S. 이스마엘, L. 자오, S. 나수히, T. 이쉬라트뇌졸중 후 신경 보호를 위한 잠재적인 접근법인 NLRP3-inflammasome의 억제과학. 국회의원, 8(1)(2018), p. 5971, 10.1038/s41598-018-24350-xPMID: 29654318; PMCID:PMC5899150.
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- [191]
X. Liu, X. Lv, Z. Liu, M. Zhang, Y. Leng성상 세포 유래 세포밖 소포체의 MircoRNA-29a는 TP53INP1 및 NF-κB/NLRP3 축을 통해 뇌 허혈 재관류 손상을 억제합니다세포 몰. Neurobiol., 42 (5) (2022), pp. 1487-1500, 10.1007/s10571-021-01040-3
- [192]
YB Liang, PP Song, YH Zhu, JM Xu, PZ Zhu, RR Liu, YS ZhangTREM-1을 표적으로 하는 LP17은 산화 스트레스와 파이롭토시스를 억제하여 뇌 허혈로 인한 신경 손상을 약화시킵니다.생화학 생물물리학. Res Commun., 529 (3) (2020), pp. 554-561, 10.1016/j.bbrc.2020.05.056
- [193]
P. An, J. Xie, S. Qiu, Y. Liu, J. Wang, X. Xiu, L. Li, M. Tang히피둘린은 NLRP3 매개 파이롭토시스 억제를 통해 뇌허혈 재관류 손상에 대한 신경보호 활성을 나타냅니다.생명과학, 232(2019), 조항 116599, 10.1016/j.lfs.2019.116599
- [194]
R. Sun, M. Peng, P. Xu, F. Huang, Y. Xie, J. Li, Y. Hong, H. Guo, Q. Liu, W. Zhu저밀도 지질단백질 수용체(LDLR)는 뇌 허혈/재관류 손상 후 NLRP3 매개 신경 열분해증을 조절합니다J. 신경염증., 17 (1) (2020), p. 330, 10.1186/s12974-020-01988-x
이 글은 무료로 보실 수 있습니다.
- [195]
Y. Wang, X. Guan, CL Gao, W. Ruan, S. Zhao, G. Kai, F. Li, T. Pang새로운 PGC-1α 활성화제인 메디오레시놀은 PPARα-GOT1 축을 통해 허혈성 뇌졸중에서 내피세포의 발열을 예방합니다.Pharmacol. 결의안, 169(2021), 조항 105640, 10.1016/j.phrs.2021.105640
- [196]
X. 카오, Y. 왕, L. 가오CHRFAM7A 과발현은 NLRP3/Caspase-1 경로에 의해 매개되는 소교세포 파이롭토시스를 억제함으로써 뇌 허혈-재관류 손상을 약화시킵니다염증, 44 (3) (2021), pp. 1023-1034, 10.1007/s10753-020-01398-4
- [197]
LL Tan, XL Jiang, LX Xu, G. Li, CX Feng, X. Ding, B. Sun, ZH Qin, ZB Zhang, X. Feng, M. LiTP53 유발 해당작용 및 세포사멸 조절제는 저산소증/허혈 유발 소교세포 파이롭토시스 및 허혈성 뇌 손상을 완화합니다.신경 재생. 결의안, 16(6)(2021), pp. 1037-1043, 10.4103/1673-5374.300453
- [198]
X. Liu, M. Zhang, H. Liu, R. Zhu, H. He, Y. Zhou, Y. Zhang, C. Li, D. Liang, Q. Zeng, G. Huang골수 중간엽 줄기세포 유래 엑소좀은 소교세포 M1/M2 표현형을 조절하여 뇌 허혈-재관류 손상으로 인한 신경염증 및 발열증을 약화시킵니다특급. Neurol., 341(2021), 조항 113700, 10.1016/j.expneurol.2021.113700
- [199]
Y. Huang, F. Tan, Y. Zhuo, J. Liu, J. He, D. Duan, M. Lu, Z. Hu저산소증이 전제된 후각 점막 중간엽 줄기 세포는 HIF-1α를 활성화하여 뇌 허혈/재관류에 의해 유발된 파이롭토시스 및 소교세포의 세포사멸을 폐지합니다노화(Albany NY), 12 (11) (2020), 페이지 10931-10950, 10.18632/aging.103307
- [200]
Z. Peng, S. Wang, G. Chen, M. Cai, R. Liu, J. Deng, J. Liu, T. Zhang, Q. Tan, C. HaiGastrodin은 항산화 및 항염증 활동을 개선하고 세포 사멸 경로를 억제하여 생쥐의 뇌 허혈성 손상을 완화합니다.Neurochem Res., 40 (4) (2015), pp. 661-673, 10.1007/s11064-015-1513-5Epub 2015 1월 13일. PMID: 25582916
- [201]
Z. Peng, S. Wang, G. Chen, M. Cai, R. Liu, J. Deng, J. Liu, T. Zhang, Q. Tan, C. HaiGastrodin은 항산화 및 항염증 활동을 개선하고 세포 사멸 경로를 억제하여 생쥐의 뇌 허혈성 손상을 완화합니다.Neurochem Res, 40(4)(2015), pp. 661-673, 10.1007/s11064-015-1513-5
- [202]
S. Li, L. Bian, X. Fu, Q. Ai, Y. Sui, A. Zhang, H. Gao, L. Zhong, D. LuGastrodin 전처리는 뇌 허혈성 재관류로 인한 쥐의 뇌 손상을 완화합니다Brain Res, 1712 (2019), pp. 207-216, 10.1016/j.brainres.2019.02.006
- [203]
W. Sun, H. Lu, L. Lyu, P. Yang, Z. Lin, L. Li, L. Sun, D. LuGastrodin은 NLRP3/caspase-1 경로를 조절하여 미세혈관 재관류 손상으로 인한 발열증을 개선합니다J. Physiol. Biochem, 75 (4) (2019), pp. 531-547, 10.1007/s13105-019-00702-7
- [204]
HS Zhang, B. Ouyang, XY Ji, MF LiuGastrodin은 lncRNA NEAT1/miR-22-3p 축을 조절하여 Pyroptosis를 억제하여 뇌 허혈/재관류 손상을 완화합니다.Neurochem Res, 46 (7) (2021), pp. 1747-1758, 10.1007/s11064-021-03285-2
- [205]
카이 린이샤오보. Yuan Libanget al. NL RP3 염증복합체 신호 전달 경로를 통한 포도당-산소 결핍/재관류 손상으로 인한 미세아교세포에 대한 탄시논 IIA의 보호 효과J. 쓰촨 대학교 (Med. Ed.), 47(5)(2016), pp. 660-664
- [206]
정즈쥔, 왕셴잉, 량휘만성 뇌허혈이 있는 쥐의 인지 기능에 대한 레오누린의 효과턱. 가볍게 두드리기. Med., 40(9)(2018), pp. 2045-2048
- [207]
왕훙취안, 잔지에류마티스 관절염 치료에 있어서 작약의 총글루코사이드의 약리학적 효과 및 기전메드. Her., 34(2)(2015), pp. 199-201
- [208]
Xiong Zhe, Xie Jiaxuan, Zhu Kunbo, 외.Paeoniflorin은 산에 민감한 이온 채널을 조절하여 진통 효과를 발휘합니다.메드. Her., 38(11)(2019), pp. 1403-1407
- [209]
Zulifiya Aikemu, Mai Hepureti Wupuer, Xing Huihui, Fan Mingxin, Zhang Junjiang급성 뇌경색 쥐의 소교세포 활성화에 의해 조절되는 신경 발열증에 대한 paeoniflorin의 효과J. Brain Neurol. Dis., 29(08)(2021), pp. 469-474
- [210]
장웨이, 마징핑NLRP3 염증복합체 신호 전달 경로를 통해 쥐의 뇌 허혈-재관류 손상 후 세포 발열증에 대한 부틸프탈라이드의 효과J. 통합. 턱. 서쪽. 메드. 심혈관. 뇌혈관. Dis., 18(06)(2020), pp. 898-902
- [211]
Wang Shaohua, Sun Fanfan, Xue Wei, Jiang Qin, Dong Liuyi Breviscapine만성 뇌 허혈이 있는 쥐에서 NLRP3 인플라마좀 활성화를 조절하고 신경 세포의 발열 및 세포사멸을 억제합니다J. Anhui Med. Univ., 55 (09) (2020), pp. 1321-1326, 10.19405/j.cnki.issn1000-1492.2020.09.002
- [212]
손유지에, 장난난, 조멍쥐의 뇌 조직에서 허혈-재관류 중 세포 발열증에 대한 레스베라트롤의 조절 효과와 소교세포 NLRP3 인플라마솜, Caspase-1 및 ZO-1에 대한 효과J. 하이난 메드. Coll., 25(17)(2019), pp. 1291-1294, 10.13210/j.cnki.jhmu.20190716.002
- [213]
DC Ma, NN Zhang, YN Zhang, HS Chen주사용 살비아놀산은 M1/M2 표현형을 전환하고 생체 내 및 시험관 내 소교세포에서 NLRP3 염증복합체/화농증 축을 억제하여 뇌 허혈/재관류 손상을 완화합니다.J. Ethnopharmacol., 270(2021), 조항 113776, 10.1016/j.jep.2021.113776
- [214]
P. An, J. Xie, S. Qiu, Y. Liu, J. Wang, X. Xiu, L. Li, M. Tang히피둘린은 NLRP3 매개 파이롭토시스 억제를 통해 뇌허혈 재관류 손상에 대한 신경보호 활성을 나타냅니다.생명과학, 232(2019), 조항 116599, 10.1016/j.lfs.2019.116599
- [215]
J. 장, C. 우, L. Gao, G. Du, X. Qin황기 유래 황기 IV: 약리학적 효과에 관한 연구 고찰고급 Pharmacol., 87(2020), 페이지 89-112, 10.1016/bs.apha.2019.08.002
- [216]
Y. Zang, J. Wan, Z. Zhang, S. Huang, X. Liu, W. Zhang심부전에서 아스트라갈로사이드 IV의 업데이트된 역할바이오메드. Pharm., 126 (2020), 조항 110012, 10.1016/j.biopha.2020.110012
- [217]
T. Chen, P. Yang, Y. Jia암 치료에서 아스트라갈로사이드 IV의 분자 메커니즘(검토)Int J. Mol. Med, 47(3)(2021), p. 13, 10.3892/ijmm.2021.4846
- [218]
YQ Tan, HW Chen, J. Li, IV 아스트라갈로사이드심혈관 질환 치료에 효과적인 약물약물 Des. DevelTher, 14 (2020), pp. 3731-3746, 10.2147/DDDT.S272355
이 글은 무료로 보실 수 있습니다.
- [219]
A. Datta, D. Sarmah, L. Mounica, H. Kaur, R. Kesharwani, G. Verma, P. Veeresh, V. Kotian, K. Kalia, A. Borah, X. Wang, KR Dave, DR Yavagal, P. 바타차리야허혈성 뇌졸중과 표적 약물요법의 세포 사멸 경로번역. 뇌졸중 해결, 11 (6) (2020), pp. 1185-1202, 10.1007/s12975-020-00806-z
- [220]
K. Yang, L. Zeng, A. Ge, Y. Chen, S. Wang, X. Zhu, J. GeHedysarumMultijugumMaxim.-Chuanxiong Rhizoma 화합물의 HIF-VEGF 경로 조절 메커니즘과 뇌허혈-재관류 손상의 체계적인 약리학 기반 생물학적 네트워크 탐색Front Pharmacol., 12(2021), 조항 601846, 10.3389/fphar.2021.601846
- [221]
G. Wang, X. Zeng, K. Yang, S. Gong, A. Ge, W. Liu, Q. He, W. Zhang, J. GeHedysarummultijugum maxim-chuanxiong rhizoma 화합물의 뇌경색에 대한 신경보호 효과를 정량적 단백질체학을 통해 규명분명하다. 기반 보완 대체. Med., 2022 (2022), 조항 5241902, 10.1155/2022/5241902
- [222]
K. Yang, L. Zeng, A. Ge, Y. Shi, X. Zhu, W. Liu, J. Ge허혈성 뇌졸중에 대한 hedysarummultijugummaxim.-Chuanxiong rhizoma 화합물의 효과: 네트워크 및 실험약리학 기반 연구산화물. 메드. 세포 수명(Cell Longev.), 2020(2020), 조항 6072380, 10.1155/2020/6072380
- [223]
비아오 탕뇌허혈-재관류 손상에서 mitophagy-NLRP3 염증복합체 경로의 역할과 삼칠인삼 사포닌과 아스트라갈로사이드 IV의 개입[D]후난대학교 전통. 턱. 메드. (2019), 10.27138/d.cnki.ghuzc.2019.000014
- [224]
나 리저산소성 허혈성 뇌 손상을 개선하기 위해 MMP-9 매개 NLRP3/Caspase-1 신호 전달 경로를 조절하는 아스트라갈로사이드 IV의 분자 메커니즘[D]요녕대학교 전통. 턱. 메드. (2021), 10.27213/d.cnki.glnzc.2021.000042
- [225]
W. Xie, X. Meng, Y. Zhai, P. Zhou, T. Ye, Z. Wang, G. Sun, X. Sun삼칠인삼 사포닌의 항우울제 또는 항불안 효과 기전에 대한 검토와 식물화학 및 약리학에 대한 네트워크 분석분자, 23(4)(2018), p. 940, 10.3390/분자23040940
- [226]
J. Qu, N. Xu, J. Zhang, X. Geng, R. Zhang삼칠인삼 사포닌과 신경계 질환에서의 응용: 서사적 검토앤. 번역. Med, 8(22)(2020), p. 1525, 10.21037/atm-20-6909
- [227]
H. Liu, X. Lu, Y. Hu, X. 팬Panax ginseng과 Panax notoginseng의 화학 성분은 치료 효능이 다른 이유를 설명합니다Pharmacol. 결의안, 161(2020), 조항 105263, 10.1016/j.phrs.2020.105263
- [228]
He Xu, Ge Jinwen, Deng Changqing, Guo Taiping, Pan Aihua, Li. 지위안 파낙스삼칠인삼 사포닌은 전뇌허혈 후 해마 CA1 부위의 신경세포사멸을 억제하는 작용과 그 기전턱. 목초. Med., 47(08)(2016), pp. 1337-1344
- [229]
He Xu, Ge Jinwen, Huang Jun, Pan Aihua, Li Zhiyuan전뇌허혈이 있는 성체 쥐의 측뇌실 뇌실막 부위의 신경 재생에 대한 삼칠인삼 사포닌의 효과턱. 목초. Med., 47 (09) (2016), pp. 1535-1540
- [230]
He Xu, Liu Yingfei, Wang Wei, Zhao Hong, Yan Xiaoxin, Yi Yaqiao, Ge Jinwen전뇌허혈 쥐의 해마 뇌부종 및 GFAP 발현에 대한 삼칠인삼 사포닌의 효과턱. 목초. Med., 48(22)(2017), pp. 4695-4700
- [231]
He Xu, Liu Yingfei, Wang Wei, Sun Qiumin, Pan Aihua, Ge Jinwen전뇌허혈 쥐의 학습 및 기억에 대한 삼칠인삼 사포닌의 효과 및 작용기전턱. 목초. Med., 50(22)(2019), pp. 5521-5526
- [232]
탕뱌오뇌허혈-재관류 손상에서 mitophagy-NLRP3 염증복합체 경로의 역할과 삼칠인삼 사포닌과 아스트라갈로사이드 IV의 개입[D]후난대학교 전통. 턱. 메드. (2019), 10.27138/d.cnki.ghuzc.2019.000014
- [233]
저우잉DRP1/NLRP3 경로를 기반으로 한 급성 뇌경색 후 발열증에 대한 도홍시우 달임의 효과 및 기전[D]베이징대학교 전통. 턱. 메드. (2021), 10.26973/d.cnki.gbjzu.2021.000498
- [234]
왕 멍멍뇌허혈-재관류 쥐의 세포 발열에 대한 도홍시우 달임의 조절 효과에 관한 연구 [D]안휘대학교 전통. 턱. 메드. (2020), 10.26922/d.cnki.ganzc.2020.000120
- [235]
마잉쥐안, 샹유잉, 왕더지에, 외.감잎 플라보노이드의 항염증 및 항산화 신경보호 효과 디-갈락토오스로 인해 노화된 쥐푸단 J.: Med. Ed., 42(1)(2015), pp. 7-12
- [236]
진페이장L-NAME 유발 고혈압 쥐에 대한 감잎의 총 플라보노이드의 항고혈압 효과 및 기전 [D]난닝 광시 의과대학(2008)
- [237]
탕 징심혈관 질환 및 당뇨병 예방 및 치료에 있어서 Ye와 그 제품의 새로운 진전산시메드. J., 37(16)(2008), pp. 740-741
- [238]
베이웨이젠뇌허혈에 대한 감잎 유효성분과 나오신칭정의 신경보호 효과에 관한 연구[D]광저우 쑨원대학교(2004)
- [239]
민동위, 리훙옌, 관레, 장장, 장하이닝, 추이신위에, 왕펑, 조용강뇌허혈-재관류 손상 모델 쥐에 대한 Naoxinqing의 보호 메커니즘턱. 조직공학 결의안, 24(02)(2020), pp. 215-222
- [240]
XD Wen, EH Liu, J. Yang, CY Li, W. Gao, LW Qi, CZ Wang, CS Yuan, P. Li액체 크로마토그래피-4중극자 비행시간 질량분석법을 이용한 쥐 소변 내 부양환오탕 대사산물의 동정J.Pharm. 바이오메드. Anal., 67–68 (2012), pp. 114-122, 10.1016/j.jpba.2012.04.026
- [241]
H. Zhang, WR Wang, R. Lin, JY Zhang, QL Ji, QQ Lin, LN Yang부양환오탕은 쥐의 CRP와 CD40을 감소시켜 기결핍 및 혈액 정체 증후군을 동반한 관상 동맥 심장 질환을 개선합니다.J. Ethnopharmacol., 130 (1) (2010), pp. 98-102, 10.1016/j.jep.2010.04.017
- [242]
K. Yang, L. Zeng, A. Ge, Y. Shi, X. Zhu, W. Liu, J. Ge허혈성 뇌졸중에 대한 hedysarum multijugum maxim.-Chuanxiong rhizoma 화합물의 효과: 네트워크 및 실험 약리학 기반 연구산화물. 메드. 세포 수명(Cell Longev.), 2020(2020), 조항 6072380, 10.1155/2020/6072380
- [243]
K. Yang, L. Zeng, A. Ge, Y. Chen, S. Wang, X. Zhu, J. GeHIF-VEGF 경로에 대한 hedysarum multijugum maxim.-chuanxiong rhizoma 화합물의 조절 메커니즘과 체계적 약리학을 기반으로 한 뇌허혈-재관류 손상의 생물학적 네트워크 탐색Front Pharm., 12 (2021), 조항 601846, 10.3389/fphar.2021.601846
- [244]
Y. She, L. Shao, Y. Zhang, Y. Hao, Y. Cai, Z. Cheng, C. Deng, X. Liu쥐의 뇌허혈-재관류 손상 후 발열증에 대한 부양환오탕의 배당체의 신경보호 효과J. Ethnopharmacol., 242(2019), 조항 112051, 10.1016/j.jep.2019.112051
- [245]
판준이, 천용빈, 류치화, 뤄옌핑, 리난팡, 황셴원쥐의 뇌허혈-재관류 손상 후 롱지 달임이 Caspase-1 및 IL-18 단백질 발현에 미치는 영향J. 후난 대학교 전통. 턱. Med., 41 (04) (2021), pp. 518-522
- [246]
루샤오칭, 장첸, 쑨이허혈성 뇌졸중 회복기 환자에 대한 Yiqi Huoxue Tonluo 달임의 효과와 혈역학 수준, NO, VEGF 및 ET-1 수준에 미치는 영향쓰촨 전통. 턱. Med., 37(02)(2019), pp. 142-144
- [247]
Jiang Limin, Liu Xiangzhe, Sang Feng, Guo Xiangdong, Ji Peng기를 자양하고 혈액을 활성화시키는 방법은 발열증을 억제하여 급성 허혈성 뇌졸중 쥐의 뇌 조직 염증을 감소시킵니다.J. 광저우 대학교 전통. 턱. Med., 39 (01) (2022), pp. 152-158, 10.13359/j.cnki.gzxbtcm.2022.01.026
- [248]
양휘, 탕스추, 샤오팡링허혈성 뇌졸중에 대한 신나오복원탕과 싱나오개교침의 임상관찰월드 J. 인테그르. Med., 15 (01) (2020), pp. 160-164+169, 10.13935/j.cnki.sjzx.200135
- [249]
왕유잉MCAO 쥐의 Nogo-A 및 GAP-43 발현에 대한 hUC-MSC와 결합된 신나오 복원 달임의 효과[D]후난대학교 전통. 턱. 메드. (2021), 10.27138/d.cnki.ghuzc.2021.000154
- [250]
리 신세포 발열 메커니즘을 기반으로 포도당과 산소가 결핍된 PC12 세포에 대한 신나오 복원 달임의 보호 효과에 관한 연구 [D]후난대학교 전통. 턱. 메드. (2019), 10.27138/d.cnki.ghuzc.2019.000152
- [251]
R. 양, X. 장패혈증으로 인한 폐 손상의 헤파린 치료를 위한 잠재적인 새로운 경로: hMGB1-LPS로 유발된 카스파제-11 활성화를 차단하여 폐 내피 세포 열분해증을 억제합니다.전면 세포 감염. Microbiol., 12(2022), 조항 984835, 10.3389/fcimb.2022.984835PMID: 36189354; PMCID: PMC9519888.
- [252]
A. 프라타판, T. 라자모한실험적 심근경색에서 부드러운 코코넛 물의 항산화 및 항혈전 활성J. Food Biochem., 35(5)(2011), pp. 1501-1507
- [253]
N. Radenahmad, F. Saleh, K. Sawangjaroen, U. Vongvatcharanon, P. Subhadhirasakul, W. Rundorn, B. Withyachumnarnkul, JR Connor알츠하이머병과 관련된 일부 병리 현상을 크게 줄일 수 있는 잠재적 치료제인 어린 코코넛 주스: 새로운 발견브르. J. Nutr., 105(5)(2011), pp. 738-746, 10.1017/S0007114510004241Epub 2010년 11월 30일. PMID: 21114897
- [254]
RH 뵈거약력학 엘-아르기닌바꾸다. 거기. Health Med, 20(3)(2014), pp. 48-54PMID: 24755570
- [255]
D. Cylwik, A. Mogielnicki, W. Buczko엘-아르기닌과 심혈관계제약 국회의원, 57(1)(2005), pp. 14-22PMID: 15849373
- [256]
D. Cylwik, A. Mogielnicki, K. Kramkowski, J. Stokowski, W. Buczko항혈전 효과 엘- 고혈압 쥐의 아르기닌J. Physiol. Pharm., 55(3)(2004), pp. 563-574PMID: 15381827
- [257]
SA 타누세푸테로, MT Lin, SL 예, CL 예정맥 내 아르기닌 투여는 NLRP3 염증복합체 활성을 하향 조절하고 복합성 패혈증이 있는 생쥐의 급성 신장 손상을 약화시킵니다중재. Inflamm., 2020(2020), 조항 3201635, 10.1155/2020/3201635PMID: 32454788; PMCID:PMC7238342.
인용(7)
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PI3K/Akt 신호 전달을 표적으로 하는 허혈성 뇌졸중에 대한 식물요법의 발전
2023년, 식물치료연구